| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 英文缩写说明 | 第9-10页 |
| 第一章 绪论 | 第10-20页 |
| 1.1 黄蜀葵花研究概况 | 第10页 |
| 1.1.1 黄蜀葵花概述 | 第10页 |
| 1.1.2 黄蜀葵花研究进展 | 第10页 |
| 1.2 黄酮的研究概况 | 第10-15页 |
| 1.2.1 黄酮概述 | 第10-11页 |
| 1.2.2 黄酮类化合物的提取方法 | 第11-13页 |
| 1.2.3 黄酮类化合物的分离纯化 | 第13-14页 |
| 1.2.4 黄酮类化合物生物活性 | 第14-15页 |
| 1.3 抗氧化性 | 第15-18页 |
| 1.3.1 抗氧化剂概述 | 第16页 |
| 1.3.2 抗氧化剂的分类 | 第16-17页 |
| 1.3.3 抗氧化活性研究 | 第17-18页 |
| 1.4 立题依据和研究内容 | 第18-20页 |
| 1.4.1 立题依据 | 第18页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第18-20页 |
| 第二章 黄蜀葵花成分分析及黄酮的提取工艺 | 第20-30页 |
| 2.1 实验材料、试剂及仪器 | 第20-21页 |
| 2.1.1 实验原料 | 第20页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第20页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第20-21页 |
| 2.2 黄蜀葵花成分分析 | 第21-23页 |
| 2.2.1 水分含量 | 第21页 |
| 2.2.2 灰分含量 | 第21页 |
| 2.2.3 蛋白质含量 | 第21-22页 |
| 2.2.4 粗脂肪含量 | 第22页 |
| 2.2.5 多糖含量 | 第22-23页 |
| 2.3 黄蜀葵花黄酮的提取 | 第23-24页 |
| 2.3.1 黄酮含量测定方法学考察 | 第23页 |
| 2.3.2 黄酮得率的计算 | 第23-24页 |
| 2.3.3 单因素试验 | 第24页 |
| 2.3.4 正交试验 | 第24页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第24-28页 |
| 2.4.1 成分分析结果 | 第24-25页 |
| 2.4.2 黄酮含量测定方法学考察结果 | 第25-26页 |
| 2.4.3 单因素实验结果 | 第26-28页 |
| 2.4.4 正交试验结果 | 第28页 |
| 2.5 本章小结 | 第28-30页 |
| 第三章 黄蜀葵花黄酮的分离纯化 | 第30-40页 |
| 3.1 实验材料、试剂及仪器 | 第30-31页 |
| 3.1.1 实验原料 | 第30页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第30页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第30-31页 |
| 3.2 体外抗氧化活性测定 | 第31-32页 |
| 3.2.1 DPPH·清除能力测定 | 第31页 |
| 3.2.2 ·OH清除能力测定 | 第31页 |
| 3.2.3 H_2O_2清除能力测定 | 第31-32页 |
| 3.3 AFC的分离纯化及鉴定 | 第32-33页 |
| 3.3.1 分级萃取 | 第32页 |
| 3.3.2 聚酰胺柱层析分离 | 第32页 |
| 3.3.3 Sephadex LH-20 柱层析分离 | 第32-33页 |
| 3.3.4 HPLC-MS分析 | 第33页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第33-39页 |
| 3.4.1 各萃取相的得率及黄酮含量 | 第33页 |
| 3.4.2 各萃取相的抗氧化性能 | 第33-35页 |
| 3.4.3 AFB的聚酰胺柱层析分离结果 | 第35页 |
| 3.4.4 葡聚糖凝胶柱层析 | 第35-36页 |
| 3.4.5 LC-MS结果分析 | 第36-39页 |
| 3.5 本章小结 | 第39-40页 |
| 第四章 黄蜀葵花黄酮的应用研究 | 第40-55页 |
| 4.1 实验材料、试剂及仪器 | 第40-41页 |
| 4.1.1 实验原料 | 第40页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第40页 |
| 4.1.3 实验仪器与设备 | 第40-41页 |
| 4.2 黄蜀葵花黄酮对DNA氧化损伤的保护作用 | 第41页 |
| 4.2.1 黄蜀葵花黄酮对·OH诱导DNA氧化损伤的保护作用 | 第41页 |
| 4.2.2 黄蜀葵花黄酮对H_2O_2诱导DNA氧化损伤的保护作用 | 第41页 |
| 4.3 黄蜀葵花黄酮对黄嘌呤氧化酶的抑制作用及机理 | 第41-42页 |
| 4.3.1 黄蜀葵花黄酮对黄嘌呤氧化酶的抑制作用 | 第41-42页 |
| 4.3.2 AFB-2 对XO的抑制可逆性研究 | 第42页 |
| 4.3.3 AFB-2 对XO的抑制动力学研究 | 第42页 |
| 4.4 黄蜀葵花黄酮对头发损伤的保护作用 | 第42-44页 |
| 4.4.1 头发H_2O_2损伤模型 | 第42页 |
| 4.4.2 头发UV损伤模型 | 第42-43页 |
| 4.4.3 蛋白损失测定法 | 第43-44页 |
| 4.4.4 扫描电镜观察法 | 第44页 |
| 4.5 实验结果 | 第44-54页 |
| 4.5.1 黄蜀葵花黄酮对·OH诱导的DNA氧化损伤的保护作用 | 第44-46页 |
| 4.5.2 黄蜀葵花黄酮对H_2O_2诱导的DNA氧化损伤的保护作用 | 第46-47页 |
| 4.5.3 黄蜀葵花黄酮对XO的抑制作用 | 第47页 |
| 4.5.4 AFB-2 对XO抑制可逆性判断 | 第47-48页 |
| 4.5.5 AFB-2 对XO的抑制动力学研究 | 第48页 |
| 4.5.6 黄蜀葵花黄酮对头发损伤的保护作用 | 第48-54页 |
| 4.6 本章小结 | 第54-55页 |
| 第五章 结论与展望 | 第55-57页 |
| 5.1 全文总结 | 第55-56页 |
| 5.2 展望 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-63页 |
| 附录：作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第63页 |
