| 缩略词 | 第4-5页 |
| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-20页 |
| 1.1 黄瓜单性结实与超级子房现象 | 第11-12页 |
| 1.1.1 黄瓜单性结实机理研究进展 | 第11-12页 |
| 1.1.2 黄瓜超级子房现象研究进展 | 第12页 |
| 1.2 植物开花时间研究进展 | 第12-14页 |
| 1.2.1 植物开花时间与内源激素的关系 | 第12-13页 |
| 1.2.2 植物开花时间与环境因子关系 | 第13-14页 |
| 1.3 植物蛋白质组学研究进展 | 第14-16页 |
| 1.3.1 植物蛋白质组学研究内容 | 第14页 |
| 1.3.2 植物蛋白质组学研究技术 | 第14-15页 |
| 1.3.3 植物蛋白质组学的应用 | 第15-16页 |
| 1.4 植物蛋白质组学在黄瓜研究上的应用 | 第16-19页 |
| 1.4.1 黄瓜发育蛋白质组学 | 第16-17页 |
| 1.4.2 黄瓜抗病蛋白质组学 | 第17-18页 |
| 1.4.3 黄瓜抗逆蛋白质组学 | 第18-19页 |
| 1.4.4 黄瓜突变体蛋白质组学 | 第19页 |
| 1.5 本试验目的与意义 | 第19-20页 |
| 第二章 黄瓜超级子房的诱导方法 | 第20-27页 |
| 2.1 材料与方法 | 第20-23页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第20页 |
| 2.1.2 栽培管理方法 | 第20-21页 |
| 2.1.3 标记及取样方法 | 第21-23页 |
| 2.2 结果与分析 | 第23-25页 |
| 2.2.1 栽培管理对子房诱导发生率的影响 | 第23页 |
| 2.2.2 栽培管理对植株生长势影响 | 第23-24页 |
| 2.2.3 晴天对子房诱导发生率的影响 | 第24-25页 |
| 2.3 讨论 | 第25-26页 |
| 2.4 结论 | 第26-27页 |
| 第三章 黄瓜雌花花冠蛋白质双向电泳技术体系的建立 | 第27-42页 |
| 3.1 试验材料 | 第27页 |
| 3.2 试验方法 | 第27-34页 |
| 3.2.1 黄瓜雌花花冠蛋白质的提取方法 | 第27-28页 |
| 3.2.2 蛋白质溶解 | 第28-29页 |
| 3.2.3 蛋白质定量 | 第29-30页 |
| 3.2.4 双向电泳 | 第30-33页 |
| 3.2.5 凝胶染色 | 第33-34页 |
| 3.2.6 图像采集及分析 | 第34页 |
| 3.3 结果与分析 | 第34-39页 |
| 3.3.1 不同蛋白质提取方法的比较 | 第34-37页 |
| 3.3.2 双向电泳技术体系的建立 | 第37-39页 |
| 3.4 讨论 | 第39-41页 |
| 3.4.1 样品制备对双向电泳的影响 | 第39-40页 |
| 3.4.2 IPG胶条的不同pH梯度对双向电泳图谱的影响 | 第40页 |
| 3.4.3 蛋白质上样量对双向电泳图谱的影响 | 第40页 |
| 3.4.4 凝胶染色方法对双向电泳图谱的影响 | 第40-41页 |
| 3.5 结论 | 第41-42页 |
| 第四章 黄瓜超级子房雌花花冠蛋白质组学研究 | 第42-62页 |
| 4.1 试验材料 | 第42页 |
| 4.2 试验方法 | 第42-43页 |
| 4.2.1 蛋白质提取方法与双向电泳 | 第42-43页 |
| 4.2.2 差异蛋白点质谱鉴定及生物信息学分析 | 第43页 |
| 4.3 结果与分析 | 第43-60页 |
| 4.3.1 超级子房和正常子房雌花开花进程 | 第43-44页 |
| 4.3.2 超级子房和正常子房雌花花冠双向电泳图谱分析 | 第44-47页 |
| 4.3.3 差异蛋白质点生物信息学分析 | 第47-60页 |
| 4.4 讨论 | 第60-61页 |
| 4.4.1 超级子房形成的关键时期 | 第60页 |
| 4.4.2 超级子房形成的关键蛋白质 | 第60-61页 |
| 4.5 结论 | 第61-62页 |
| 第五章 全文结论及创新点 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-69页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70页 |