| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略词 | 第10-11页 |
| 第1章 绪论 | 第11-23页 |
| 1.1 UV | 第11-13页 |
| 1.2 多糖类中药 | 第13-15页 |
| 1.3 线虫 | 第15-22页 |
| 1.3.1 线虫的自然史 | 第16页 |
| 1.3.2 线虫的解剖学 | 第16-17页 |
| 1.3.3 线虫的生命周期 | 第17-18页 |
| 1.3.4 选择线虫作为研究对象的原因 | 第18-19页 |
| 1.3.5 DAF-16 | 第19-22页 |
| 1.4 本论文研究的意义 | 第22-23页 |
| 第2章 材料与方法 | 第23-37页 |
| 2.1 实验材料 | 第23-24页 |
| 2.1.1 线虫及菌株 | 第23页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第23-24页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-37页 |
| 2.2.1 中药的处理 | 第25页 |
| 2.2.2 线虫的一般培养 | 第25-27页 |
| 2.2.3 利用线虫进行中药筛选的方法 | 第27-28页 |
| 2.2.4 线虫寿命的统计 | 第28页 |
| 2.2.5 确定最佳药物浓度 | 第28-29页 |
| 2.2.6 ROS的检测方法 | 第29页 |
| 2.2.7 测定药物对突变株寿命的影响 | 第29页 |
| 2.2.8 SOD表达量的检测方法 | 第29-30页 |
| 2.2.9 线虫蛋白质的提取方法 | 第30页 |
| 2.2.10 SOD活性的检测方法 | 第30-31页 |
| 2.2.11 DPPH自由基清除法 | 第31-32页 |
| 2.2.12 qPCR的引物设计 | 第32页 |
| 2.2.13 RNA的提取 | 第32-33页 |
| 2.2.14 RNA反转录成cDNA | 第33页 |
| 2.2.15 常规PCR | 第33-34页 |
| 2.2.16 电泳 | 第34页 |
| 2.2.17 荧光定量PCR | 第34-35页 |
| 2.2.18 荧光定量PCR的结果分析方法 | 第35-37页 |
| 第3章 结果与讨论 | 第37-64页 |
| 3.1 利用线虫进行抗辐射中药的筛选结果 | 第37-49页 |
| 3.2 薄荷抗氧化作用机制的初步研究 | 第49-60页 |
| 3.2.1 最佳药物浓度 | 第49-50页 |
| 3.2.2 线虫体内ROS的含量变化 | 第50-51页 |
| 3.2.3 通过突变株来探索薄荷的抗氧化作用机制 | 第51-54页 |
| 3.2.4 SOD表达量的检测结果 | 第54-58页 |
| 3.2.5 SOD活性的检测结果 | 第58-59页 |
| 3.2.6 DPPH自由基清除法检测薄荷的抗氧化能力 | 第59-60页 |
| 3.3 利用荧光定量PCR进一步探索薄荷的作用机制 | 第60-64页 |
| 第4章 结论 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |