| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 主要符号说明 | 第8-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-33页 |
| 1.0 植物抗病性概念 | 第13页 |
| 1.1 植物非特异性抗病性机制 | 第13-16页 |
| 1.1.2 植物的物理防御机制 | 第13-15页 |
| 1.1.3 植物抗病的生理生化机制 | 第15-16页 |
| 1.2 植物的特异性抗病性及其机制 | 第16-23页 |
| 1.2.1 植物对有毒病原体特异性识别机制 | 第17-18页 |
| 1.2.2 系统获得性抗性(Systemic Acquired Resistance,SAR) | 第18-21页 |
| 1.2.3 诱导性系统抗性(Induced Systemic Resistance,ISR) | 第21-22页 |
| 1.2.4 系统伤害反应(SWR) | 第22-23页 |
| 1.2.5 诱导性基因沉默(IGS) | 第23页 |
| 1.3 茉莉酸在调节植物抗病和感病过程中的作用 | 第23-27页 |
| 1.3.1 茉莉酸的生物合成 | 第23-25页 |
| 1.3.2 茉莉酸在植物体内的分布 | 第25页 |
| 1.3.3 茉莉酸在植物体内抗病信号转到中的作用 | 第25-26页 |
| 1.3.4 茉莉酸与水杨酸 | 第26-27页 |
| 1.4 植物脂氧合酶基因研究 | 第27-32页 |
| 1.4.1 植物脂氧合酶 | 第27-29页 |
| 1.4.2 脂氧化物家族在植物抗病性研究进展 | 第29-30页 |
| 1.4.3 玉米中脂氧合酶家族基因研究进展 | 第30-32页 |
| 1.5 本研究目的和意义 | 第32-33页 |
| 第二章 通过ZmLOX3突变体与黄曲霉系统研究脂氧合酶基因宿主与病原菌间的相互作用 | 第33-59页 |
| 2.1 研究背景 | 第33-39页 |
| 2.1.1 病原真菌中脂氧化物信号的识别机制 | 第33页 |
| 2.1.2 植物中脂氧化物的识别机制 | 第33-35页 |
| 2.1.3 植物和病原真菌之间通过脂氧化物的相互作用 | 第35-39页 |
| 2.1.4 研究路线 | 第39页 |
| 2.2 实验材料 | 第39-41页 |
| 2.2.1 植物和病原菌材料 | 第39-40页 |
| 2.2.2 酶、试剂、试剂盒及引物 | 第40-41页 |
| 2.3 实验方法 | 第41-47页 |
| 2.3.1 黄曲霉菌侵染籽粒生物学分析 | 第41-47页 |
| 2.4 实验结果与分析 | 第47-56页 |
| 2.4.1 病原菌的定植 | 第47-49页 |
| 2.4.2 病原菌孢子的产生 | 第49-50页 |
| 2.4.3 黄曲霉毒素的累积 | 第50-53页 |
| 2.4.4 植物激素比例与病原菌性状的相关性 | 第53-54页 |
| 2.4.5 ZmLOX3基因表达模式和与病原菌性状的相关性 | 第54-56页 |
| 2.5 讨论 | 第56-57页 |
| 2.6 总结 | 第57-59页 |
| 2.6.1 本研究的主要结果和结论 | 第57页 |
| 2.6.2 本研究的创新之处 | 第57-59页 |
| 第三章 木霉菌(Trichoderma virens)诱导ZmLOX12对禾生炭疽菌(Colletotrichumgraminicola)产生系统诱导抗病性的分子机制 | 第59-101页 |
| 3.1 研究背景 | 第59-64页 |
| 3.1.1 木霉菌是诱导植物产生系统抗病主要益生菌 | 第59-60页 |
| 3.1.2 植物对木霉菌定植的响应 | 第60-61页 |
| 3.1.3 9-LOXs脂氧化物在植物系统诱导免疫过程中发挥重要作用 | 第61-62页 |
| 3.1.4 ZmLOX12基因功能 | 第62-64页 |
| 3.1.5 研究路线 | 第64页 |
| 3.2 实验材料 | 第64-66页 |
| 3.2.1 植物材料 | 第64-65页 |
| 3.2.2 菌株和载体 | 第65页 |
| 3.2.3 酶、试剂盒及其他试剂耗材 | 第65页 |
| 3.2.4 引物 | 第65-66页 |
| 3.3 实验方法 | 第66-82页 |
| 3.3.1 玉米/禾生炭疽菌系统诱导抗病性的分析及表型鉴定实验方法 | 第66-69页 |
| 3.3.2 研究木霉菌在宿主根部定植后,对宿主的生理生化指标的影响 | 第69-71页 |
| 3.3.3 研究木霉菌在宿主根部定植后,对宿主体内相关基因表达的影响 | 第71-73页 |
| 3.3.4 木霉菌定植lox12-1突变体后对诱导ISR抵抗禾生炭疽菌侵染的生理生化指标测定和qPCR分析方法 | 第73-74页 |
| 3.3.5 ZmLOX12基因启动子的克隆与功能分析 | 第74-82页 |
| 3.4 结果与分析 | 第82-95页 |
| 3.4.1 ZmLOX12在接种木霉菌后及其△sm1突变体的玉米叶片中的表达分析 | 第82页 |
| 3.4.2 玉米lox12-1突变体在木霉菌作用下对禾生炭疽菌的抗病性分析 | 第82-85页 |
| 3.4.3 木霉菌的定植对玉米lox12-1突变体内植物激素及根部LOX3基因表达模式分析 | 第85-87页 |
| 3.4.4 木霉菌定植后的lox12-1突变体受到禾生炭疽菌侵染后体内植物激素及与JA生物合成相关基因表达模式分析 | 第87-90页 |
| 3.4.5 ZmLOX12启动子的克隆及功能分析 | 第90-95页 |
| 3.5 讨论 | 第95-99页 |
| 3.5.1 玉米lox12-1突变体根部受到木霉菌定植后对禾生炭疽菌产生系统诱导感病 | 第95-96页 |
| 3.5.2 禾生炭疽菌侵染木霉菌定植后的lox12-1突变体中JA生物合成基因的转录受到抑制 | 第96-98页 |
| 3.5.3 木霉菌诱导LOX12启动子的表达 | 第98-99页 |
| 3.6 总结 | 第99-101页 |
| 3.6.1 本研究的主要结果和结论 | 第99-100页 |
| 3.6.2 本研究的创新之处 | 第100-101页 |
| 附录 | 第101-103页 |
| 参考文献 | 第103-117页 |
| 致谢 | 第117-119页 |
| 攻读学位期间发表及待发表学术论文目录 | 第119页 |
