| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 引言 | 第10-12页 |
| 1 绪论 | 第12-22页 |
| ·固定化酶概述 | 第12页 |
| ·酶固定化的方法 | 第12-15页 |
| ·吸附法 | 第12-13页 |
| ·共价结合法 | 第13-14页 |
| ·交联法 | 第14页 |
| ·包埋法 | 第14-15页 |
| ·酶固定化的载体 | 第15-19页 |
| ·有机载体 | 第15-16页 |
| ·无机载体 | 第16-19页 |
| ·固定化酶的应用 | 第19-20页 |
| ·催化拆分手性化合物 | 第19页 |
| ·催化水解反应 | 第19页 |
| ·催化酯化反应 | 第19-20页 |
| ·催化酯交换反应 | 第20页 |
| ·本课题研究的内容及意义 | 第20-22页 |
| ·研究内容 | 第20-21页 |
| ·研究意义 | 第21-22页 |
| 2 实验 | 第22-26页 |
| ·实验试剂 | 第22-23页 |
| ·实验仪器 | 第23-24页 |
| ·实验路线 | 第24-25页 |
| ·测试与表征 | 第25-26页 |
| 3 氧化锌纳米线/大孔二氧化硅(ZnO NWs/SiO_2)复合载体固定化C. antarctica lipaseB催化拆分(R, S)2辛醇的研究 | 第26-42页 |
| ·引言 | 第26页 |
| ·实验部分 | 第26-31页 |
| ·载体的制备 | 第26-28页 |
| ·负载量测定 | 第28-29页 |
| ·活性测定 | 第29-30页 |
| ·酶催化拆分(R, S)2辛醇 | 第30-31页 |
| ·GC检测分析 | 第31页 |
| ·结果与讨论 | 第31-41页 |
| ·载体的结构表征 | 第31-33页 |
| ·ZnO NWs/SiO_2和大孔SiO_2载体的负载量和固定化CALB的活性 | 第33-34页 |
| ·ZnO NWs/SiO_2和大孔SiO_2载体固定化CALB与游离CALB催化拆分2-辛醇的反应进程 | 第34-35页 |
| ·影响ZnO NWs/SiO_2载体固定化CALB催化拆分 2-辛醇的因素 | 第35-39页 |
| ·固定化酶的重复使用 | 第39-41页 |
| ·本章小结 | 第41-42页 |
| 4 氧化锌纳米线/大孔二氧化硅(ZnO NWs/SiO_2)微波吸附载体固定化Candida rugosalipase提高酶催化性能 | 第42-55页 |
| ·引言 | 第42-43页 |
| ·实验部分 | 第43-46页 |
| ·ZnO NWs/SiO_2复合载体吸附固定Candida rugosa lipase (CRL) | 第43-44页 |
| ·活性测定 | 第44页 |
| ·ZnO NWs/SiO_2-CRL与游离CRL酶的热稳定性 | 第44页 |
| ·在微波辅助和传统加热条件下Candida rugosa lipase (CRL)催化植物甾醇和油酸的酯化反应 | 第44-45页 |
| ·GC检测分析 | 第45-46页 |
| ·结果与讨论 | 第46-53页 |
| ·ZnO NWs/SiO_2和大孔SiO_2载体的负载量和两种载体固定化CRL的活性 | 第46页 |
| ·三维大孔SiO_2内有无ZnO纳米线在微波辅助加热条件下催化酯化反应的影响 | 第46-49页 |
| ·游离CRL酶与ZnO NWs/SiO_2-CRL的热稳定性 | 第49-50页 |
| ·微波辅助下反应条件对ZnO NWs/SiO_2-CRL催化合成植物甾醇酯的影响 | 第50-53页 |
| ·本章小结 | 第53-55页 |
| 5 结论与创新 | 第55-57页 |
| ·结论 | 第55-56页 |
| ·创新 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-66页 |
| 在学研究成果 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
