| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 1 绪论 | 第9-14页 |
| ·光核桃(Prunus mira koehne Kov et.Kpst)的简介 | 第9页 |
| ·DNA分子标记 | 第9-11页 |
| ·DNA分子标记在果树种质资源中的应用 | 第10页 |
| ·DNA分子标记在果树种质资源中的前景及展望 | 第10-11页 |
| ·SSR和ISSR两种分子标记 | 第11-12页 |
| ·SSR分子标记 | 第11-12页 |
| ·ISSR分子标记 | 第12页 |
| ·光核桃的研究现状 | 第12-13页 |
| ·研究内容及目的意义 | 第13-14页 |
| 2 实验材料与方法 | 第14-23页 |
| ·植物材料 | 第14-17页 |
| ·DNA提取 | 第17-18页 |
| ·常规CTAB法提取基因组总DNA | 第17页 |
| ·改良CTAB法提取基因组总DNA | 第17-18页 |
| ·SSR遗传多样性分析 | 第18-20页 |
| ·DNA提取 | 第18页 |
| ·SSR-PCR体系的建立 | 第18-19页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第19-20页 |
| ·数据分析 | 第20页 |
| ·ISSR遗传多样性分析 | 第20-22页 |
| ·DNA提取 | 第20页 |
| ·ISSR-PCR体系的优化 | 第20-21页 |
| ·引物的筛选 | 第21页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳 | 第21页 |
| ·ISSR遗传多样性分析 | 第21-22页 |
| ·ISSR主成分分析 | 第22页 |
| ·SSR及ISSR的综合分析 | 第22-23页 |
| 3 结果与分析 | 第23-36页 |
| ·DNA提取结果 | 第23-24页 |
| ·基因组总DNA检测 | 第23-24页 |
| ·SSR遗传多样性分析结果 | 第24-27页 |
| ·SSR的多态性结果 | 第24-25页 |
| ·SSR分析材料遗传关系的结果 | 第25-26页 |
| ·SSR主成分(PcoA)分析结果 | 第26-27页 |
| ·ISSR遗传多样性分析结果 | 第27-34页 |
| ·ISSR-PCR体系的建立 | 第27-29页 |
| ·引物筛选结果 | 第29-30页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳检测结果 | 第30-31页 |
| ·ISSR遗传多样性分析结果 | 第31-33页 |
| ·ISSR主成分(PcoA)分析结果 | 第33-34页 |
| ·SSR及ISSR综合分析结果 | 第34-36页 |
| 4 讨论 | 第36-41页 |
| ·DNA提取讨论 | 第36页 |
| ·SSR遗传多样性分析讨论 | 第36-37页 |
| ·影响条带读取的因素 | 第36页 |
| ·SSR的多态性 | 第36-37页 |
| ·SSR种群间的遗传多样性 | 第37页 |
| ·SSR种群内的遗传多样性 | 第37页 |
| ·ISSR遗传多样性分析讨论 | 第37-39页 |
| ·ISSR反应体系的优化 | 第37-38页 |
| ·ISSR材料遗传多样性的分析 | 第38页 |
| ·ISSR材料主成分(PcoA)分析 | 第38-39页 |
| ·两种分子标记分析讨论 | 第39-41页 |
| ·两种分子标记结果的异同 | 第39页 |
| ·两种分子标记的综合分析 | 第39-41页 |
| 结论 | 第41-43页 |
| 参考文献 | 第43-48页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第48-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |