| 摘要 | 第1-4页 |
| ABSTRACT | 第4-7页 |
| 第一章 绪论 | 第7-25页 |
| ·引言 | 第7页 |
| ·分子信标 | 第7-12页 |
| ·分子信标的结构和原理 | 第7-9页 |
| ·影响分子信标的因素 | 第9-10页 |
| ·分子信标的标记研究 | 第10-12页 |
| ·分子信标的应用研究 | 第12-15页 |
| ·核酸检测 | 第12-14页 |
| ·蛋白质检测 | 第14-15页 |
| ·分子信标的小结与展望 | 第15页 |
| ·半导体纳米材料 | 第15-18页 |
| ·半导体纳米材料的特性 | 第15-17页 |
| ·半导体纳米材料的优点 | 第17-18页 |
| ·CdS纳米材料的制备方法 | 第18-20页 |
| ·溶胶-凝胶法 | 第18页 |
| ·均匀沉淀法 | 第18-19页 |
| ·水热法 | 第19页 |
| ·模板法 | 第19-20页 |
| ·CdS纳米材料的应用研究进展 | 第20-23页 |
| ·无机金属离子检测 | 第20页 |
| ·核酸识别 | 第20-21页 |
| ·免疫分析 | 第21页 |
| ·细胞成像 | 第21-22页 |
| ·生物活体成像 | 第22-23页 |
| ·半导体纳米材料的研究展望 | 第23-24页 |
| ·本论文的研究背景与意义 | 第24-25页 |
| 第二章 特异性检测汞离子和DNA的新型分子信标的研究 | 第25-38页 |
| ·引言 | 第25页 |
| ·实验部分 | 第25-29页 |
| ·实验试剂 | 第26-27页 |
| ·仪器设备 | 第27页 |
| ·实验操作步骤 | 第27-29页 |
| ·结果与讨论 | 第29-37页 |
| ·实验原理示意图 | 第29-30页 |
| ·缓冲溶液的选择 | 第30-31页 |
| ·六次甲基四胺-HClO_4最佳pH值的确定 | 第31页 |
| ·盐浓度的影响 | 第31-32页 |
| ·荧光素的对照实验 | 第32-33页 |
| ·分子信标T碱基个数的选择 | 第33页 |
| ·Hg~(2+)浓度对分子信标猝灭的影响 | 第33-34页 |
| ·分子信标的选择性 | 第34-35页 |
| ·DNA序列的检测 | 第35-37页 |
| ·小结 | 第37-38页 |
| 第三章 新型CdS/DNA纳米复合材料检测Hg~(2+)的研究 | 第38-52页 |
| ·引言 | 第38页 |
| ·实验部分 | 第38-42页 |
| ·实验试剂 | 第38-40页 |
| ·实验仪器 | 第40页 |
| ·实验操作步骤 | 第40-42页 |
| ·结果与讨论 | 第42-51页 |
| ·CdS/DNA纳米复合材料的荧光光谱与共振光散射光谱表征 | 第42-44页 |
| ·CdS/DNA复合物的荧光随时间的变化 | 第44-46页 |
| ·CdS/DNA纳米复合物与汞离子作用前后的AFM表征 | 第46页 |
| ·BR缓冲液的最佳pH值确定 | 第46-47页 |
| ·CdS/DNA对汞离子检测的线性范围 | 第47-48页 |
| ·温度对Hg~(2+)检测的影响 | 第48页 |
| ·CdS/DNA纳米复合材料检测汞离子的选择性 | 第48-49页 |
| ·汞离子对CdS/DNA纳米复合材料的荧光猝灭机理 | 第49-51页 |
| ·水样中Hg~(2+)的测定 | 第51页 |
| ·小结 | 第51-52页 |
| 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 攻读学位期间主要的研究成果 | 第62页 |
