| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-29页 |
| 1 引言 | 第15-16页 |
| 2 植物多酚化合物的研究概况 | 第16-18页 |
| ·植物多酚类化合物的结构及分类 | 第16页 |
| ·植物多酚类化合物的生理活性 | 第16-18页 |
| ·清除自由基的抗氧化活性 | 第17页 |
| ·抗肿瘤功能 | 第17页 |
| ·抗动脉粥样硬化功能 | 第17-18页 |
| ·其他功能 | 第18页 |
| 3 五味子植物研究进展 | 第18-23页 |
| ·五味子科植物学现状 | 第18-19页 |
| ·五味子化学成分研究概况 | 第19-21页 |
| ·脂溶性小分子多酚化合物-木脂素 | 第19页 |
| ·水溶性小分子多酚化合物-花色苷 | 第19-21页 |
| ·挥发性小分子萜类-挥发油 | 第21页 |
| ·水溶性大分子-多糖 | 第21页 |
| ·五味子的生理功能研究概况 | 第21-23页 |
| ·保肝作用 | 第22页 |
| ·抗癌作用 | 第22页 |
| ·调节中枢神经系统作用 | 第22-23页 |
| ·其他功能 | 第23页 |
| 4 五味子鲜果多酚的研究概况 | 第23-25页 |
| ·五味子鲜果多酚化合物的提取及其稳定性研究 | 第23-24页 |
| ·五味子水溶性多酚-花色苷的研究 | 第24页 |
| ·五味子鲜果多酚对肝细胞的保护研究概况 | 第24-25页 |
| 5 选题目的与意义 | 第25页 |
| 6 研究内容与技术路线 | 第25-29页 |
| ·研究内容 | 第25-27页 |
| ·技术路线 | 第27-29页 |
| 第二章 五味子多酚类化合物的提取优化设计 | 第29-49页 |
| 1 引言 | 第29-30页 |
| 2 材料与方法 | 第30-35页 |
| ·材料与试剂 | 第30页 |
| ·主要仪器 | 第30-31页 |
| ·实验内容与方法 | 第31-35页 |
| ·五味子果肉多酚提取物的提取方法 | 第31页 |
| ·五味子果肉花色苷提取物的制备方法 | 第31页 |
| ·五味子果籽原花青素提取物的制备方法 | 第31-32页 |
| ·随机质心映射优化方法 | 第32页 |
| ·果肉多酚含量测定 | 第32-33页 |
| ·果籽原花青素含量测定 | 第33页 |
| ·花色苷含量测定 | 第33页 |
| ·糖分测定 | 第33-34页 |
| ·蛋白质含量测定 | 第34页 |
| ·DPPH自由基清除能力测定 | 第34页 |
| ·数据处理与分析 | 第34-35页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第35-47页 |
| ·RCO随机选择给出的第一轮提取方案及提取目标结果 | 第35-38页 |
| ·RCO质心选择给出的第二轮提取方案及提取目标结果 | 第38-41页 |
| ·RCO映射优化给出的WPE和WSE的最佳提取方案 | 第41-46页 |
| ·最佳提取方案得到的五味子果肉多酚提取物中其他成分的含量测定 | 第46-47页 |
| 4 本章小结 | 第47-49页 |
| 第三章 五味子鲜果多酚提取稳定性研究 | 第49-63页 |
| 1 引言 | 第49页 |
| 2 材料与方法 | 第49-54页 |
| ·材料与试剂 | 第49-51页 |
| ·主要仪器 | 第51页 |
| ·实验内容与方法 | 第51-54页 |
| ·五味子多酚提取物的制备 | 第51页 |
| ·五味子多酚提取物稳定性研究 | 第51-52页 |
| ·不同有机酸在提取过程中对五味子多酚提取物稳定性的影响 | 第52页 |
| ·果肉多酚含量测定 | 第52页 |
| ·花色苷含量测定 | 第52页 |
| ·DPPH自由基清除能力测定 | 第52-53页 |
| ·ABTS自由基清除能力测定 | 第53页 |
| ·数据处理与分析 | 第53-54页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第54-60页 |
| ·各种酸对五味子多酚提取物稳定性的影响 | 第54-58页 |
| ·环境因素(pH/温度/时间)对五味子多酚提取物可见光特征吸收的影响 | 第54-57页 |
| ·不同酸对五味子多酚提取物稳定性的影响 | 第57-58页 |
| ·不同酸在提取过程中对五味子多酚提取物稳定性的影响 | 第58-60页 |
| 4 本章小结 | 第60-63页 |
| 第四章 五味子花色苷的结构鉴定 | 第63-73页 |
| 1 引言 | 第63页 |
| 2 材料与方法 | 第63-66页 |
| ·材料与试剂 | 第63-64页 |
| ·主要仪器 | 第64页 |
| ·实验内容与方法 | 第64-66页 |
| ·五味子花色苷纯化物的制备 | 第64-65页 |
| ·五味子花色苷纯化物成分及抗氧化性分析 | 第65页 |
| ·五味子花色苷结构鉴定 | 第65-66页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第66-71页 |
| ·五味子花色苷提取物多酚成分含量以及抗氧化活性 | 第66-67页 |
| ·五味子花色苷结构分析 | 第67-71页 |
| ·HPLC-ESI-MS | 第67-68页 |
| ·~1H and ~(13)C-NMR成像分析 | 第68-71页 |
| 4 本章小结 | 第71-73页 |
| 第五章 五味子多酚类化合物对受损肝细胞的保护活性研究 | 第73-99页 |
| 1 引言 | 第73-75页 |
| 2 材料与方法 | 第75-83页 |
| ·材料与试剂 | 第75页 |
| ·主要仪器 | 第75-76页 |
| ·实验内容与方法 | 第76-83页 |
| ·肝细胞培养、传代及分组处理 | 第76-77页 |
| ·活细胞计数 | 第77页 |
| ·细胞冻存 | 第77页 |
| ·细胞复苏 | 第77页 |
| ·MTT法与WST-1法细胞存活率检测 | 第77-78页 |
| ·流式细胞术(Flow Cytochemistry)检测细胞周期以及细胞凋亡 | 第78-80页 |
| ·实时定量PCR(Quantitative real-time PCR)检测相关基因的表达 | 第80-83页 |
| 3 实验结果与讨论 | 第83-97页 |
| ·五味子多酚提取物对受损HepG2细胞生长的保护作用 | 第83-88页 |
| ·五味子多酚提取物对受损HepG2细胞周期的影响 | 第88-92页 |
| ·五味子多酚提取物对受损HepG2细胞凋亡相关基因表达的影响 | 第92-97页 |
| 4 本章小结 | 第97-99页 |
| 第六章 全文总结与展望 | 第99-101页 |
| 1 主要结论 | 第99-100页 |
| 2 创新点 | 第100页 |
| 3 对后续工作的建议 | 第100-101页 |
| 致谢 | 第101-103页 |
| 参考文献 | 第103-113页 |
| 作者简历 | 第113页 |
