摘要 | 第1-8页 |
Abstract | 第8-10页 |
中英文缩略词表 | 第10-11页 |
第一章 文献综述 | 第11-19页 |
1 乌骨山羊及研究进展 | 第11-12页 |
·乌骨山羊的分布及特质 | 第11页 |
·乌骨山羊的研究进展 | 第11-12页 |
2 遗传多样性 | 第12-13页 |
·遗传多样性及研究的重要性 | 第12-13页 |
·畜禽遗传多样性的意义 | 第13页 |
3 遗传多样性的评估方法及研究进展 | 第13-18页 |
·形态学标记 | 第13-14页 |
·细胞学标记 | 第14页 |
·生化标记 | 第14-15页 |
·分子标记 | 第15-18页 |
·RFLP(Restriction fragment length polymorphisms) | 第15页 |
·RAPD(Random amplified polymorphic DNA) | 第15-16页 |
·AFLP(Amplified Fragment Length Polymorphisms) | 第16页 |
·SSR(Smiple sequence repeat) | 第16-17页 |
·SNP(Single nucleotide polymorphism) | 第17-18页 |
4 本试验的研究目的及意义 | 第18-19页 |
第二章 材料与方法 | 第19-54页 |
1 材料 | 第19-22页 |
·试验动物 | 第19页 |
·主要试剂及来源 | 第19-20页 |
·主要实验设备及来源 | 第20页 |
·常用溶液及试剂的配制 | 第20-22页 |
2 实验方法 | 第22-28页 |
·山羊基因组DNA提取 | 第22-23页 |
·基因组DNA的检测 | 第23-24页 |
·琼脂糖凝胶电泳检测基因组DNA | 第23页 |
·分光光度法检测基因组DNA | 第23-24页 |
·SNP的筛选 | 第24-25页 |
·最佳PCR反应条件的建立 | 第25页 |
·引物PCR反应体系 | 第25页 |
·各引物PCR反应条件 | 第25页 |
·PCR扩增产物的检测 | 第25-26页 |
·聚丙烯酰胺凝胶的制备,电泳和银染 | 第26-27页 |
·聚丙烯酰胺凝胶的制备 | 第26页 |
·PCR产物电泳 | 第26页 |
·灌胶及银染料 | 第26-27页 |
·多态位点的PCR-RFLP分析 | 第27-28页 |
3 统计方法与分析软件 | 第28-31页 |
·群体基因的抽样估计 | 第28页 |
·群体遗传变异统计量 | 第28-30页 |
·等位基因频率(Allele frequency) | 第28页 |
·多态信息含量(polymorphism information content,PIC) | 第28页 |
·杂合度(heterozygosity) | 第28-29页 |
·有效等位基因数(effective number of allele,Ne) | 第29页 |
·群体有效含量(effective population size) | 第29-30页 |
·遗传距离(genetic distence) | 第30页 |
·群体有效含量的计算方法 | 第30页 |
·变异统计方法 | 第30-31页 |
4 结果 | 第31-50页 |
·基因组DNA的提取及检测结果 | 第31页 |
·11个基因的多态性位点片段PCR扩增及检测结果 | 第31-39页 |
·14个SNP位点在研究群体中的多态性分析 | 第39-47页 |
·14个SNP位点的观察等位基因和有效等位基因 | 第39-41页 |
·14个SNP位点等位基因频率、多态信息含量及杂合度的分布 | 第41-47页 |
·各个群体间的遗传变异 | 第47-48页 |
·SNP位点的遗传分化 | 第47页 |
·各群体间的遗传距离及聚类 | 第47-48页 |
·乌骨山羊群体有效含量及保种方案 | 第48-50页 |
5 讨论 | 第50-54页 |
·样本采集及保种方案 | 第50-51页 |
·群体遗传多样性 | 第51-52页 |
·遗传分化 | 第52页 |
·遗传距离与聚类 | 第52-54页 |
第三章 全文结论 | 第54-56页 |
1 乌骨山羊群体遗传结构的研究结果 | 第54-55页 |
2 本研究的创新点与不足 | 第55-56页 |
参考文献 | 第56-62页 |
致谢 | 第62页 |