抗体微胶囊制备及其保护效果研究
| 摘要 | 第1-8页 |
| 前言 | 第8-14页 |
| 1 微胶囊技术及其在食品领域中的应用 | 第8-9页 |
| ·微胶囊简介 | 第8页 |
| ·微胶囊技术在食品领域的应用 | 第8-9页 |
| 2 微胶囊壁材的选择 | 第9页 |
| 3 壳聚糖-海藻酸钠微胶囊的制备 | 第9-11页 |
| ·壳聚糖和海藻酸钠微胶囊化原理 | 第9-10页 |
| ·壳聚糖-海藻酸钠微囊的制备方法 | 第10-11页 |
| 4 壳聚糖-海藻酸钠微囊在药物控释中的应用 | 第11-12页 |
| ·壳聚糖 | 第11页 |
| ·海藻酸钠 | 第11-12页 |
| 5 免疫球蛋白及其特点 | 第12-13页 |
| 6 本研究的目标、意义和内容 | 第13-14页 |
| 第一章 胃酸及胃蛋白酶对IgG活性的影响 | 第14-21页 |
| 1 材料与设备 | 第14-15页 |
| ·主要试剂与材料 | 第14页 |
| ·主要仪器及设备 | 第14页 |
| ·缓冲液 | 第14-15页 |
| 2 方法 | 第15-16页 |
| ·夹心ELISA操作步骤 | 第15页 |
| ·酶标板均一性检验 | 第15-16页 |
| ·兔抗鸡IgG-HRP工作浓度的确定 | 第16页 |
| ·IgG标准曲线的绘制 | 第16页 |
| ·IgG对胃酸及胃蛋白酶的稳定性 | 第16页 |
| 3 结果与分析 | 第16-19页 |
| ·酶标板均一性测定 | 第16-17页 |
| ·酶标二抗工作浓度的测定 | 第17-18页 |
| ·双抗体夹心ELISA标准曲线的绘制 | 第18页 |
| ·IgG对胃酸及胃蛋白酶的稳定性的测定 | 第18-19页 |
| 4 讨论 | 第19-20页 |
| ·IgG检测方法 | 第19-20页 |
| ·IgG稳定性 | 第20页 |
| 5 小结 | 第20-21页 |
| 第二章 微囊的制备及性能的测定 | 第21-38页 |
| 1 实验试剂与材料 | 第21页 |
| 2 仪器 | 第21页 |
| 3 实验方法 | 第21-24页 |
| ·Bradford法测定蛋白浓度 | 第21-22页 |
| ·微胶囊溶液的配制 | 第22页 |
| ·空白微球的制作 | 第22页 |
| ·空白微球溶胀率的测定 | 第22页 |
| ·BSA微胶囊的制备 | 第22-23页 |
| ·BSA微胶囊性能的测定及各因素对其影响 | 第23-24页 |
| 4 结果 | 第24-35页 |
| ·BSA的标准曲线 | 第24-25页 |
| ·空白微球溶胀曲线 | 第25-26页 |
| ·微胶囊体外释放形貌观察 | 第26-28页 |
| ·壳聚糖浓度对微囊性能的影响 | 第28-29页 |
| ·CaCl_2浓度对微囊性能的影响 | 第29-31页 |
| ·海藻酸钠浓度对微囊性能的影响 | 第31-33页 |
| ·投药量比对微囊性能的影响 | 第33-35页 |
| 5 讨论 | 第35-37页 |
| ·壳聚糖、海藻酸酸钠性质 | 第35页 |
| ·壳聚糖-海藻酸钠微胶囊的制备原理 | 第35-36页 |
| ·壳聚糖浓度对微囊性能的影响 | 第36页 |
| ·CaCl_2浓度对微囊性能的影响 | 第36-37页 |
| ·海藻酸钠浓度对微囊性能的影响 | 第37页 |
| ·BSA与海藻酸钠质量比对微胶囊性能的影响 | 第37页 |
| 6 小结 | 第37-38页 |
| 第三章 IgG微胶囊的制备及性能检测 | 第38-44页 |
| 1 实验试剂与材料 | 第38页 |
| 2 仪器 | 第38页 |
| 3 实验方法 | 第38-39页 |
| ·IgG微胶囊的制备 | 第38页 |
| ·抗体活性的检测 | 第38-39页 |
| ·冷冻干燥对抗体活性的影响 | 第39页 |
| ·微胶囊对IgG保护效果的体外研究 | 第39页 |
| 4 结果与分析 | 第39-43页 |
| ·冷冻干燥对抗体活性的影响 | 第39-40页 |
| ·模拟胃液对胶囊化抗体活性的影响 | 第40-41页 |
| ·IgG微胶囊的体外释放效果 | 第41-42页 |
| ·抗体微囊对高温高湿敏感性检验 | 第42-43页 |
| 5 讨论 | 第43页 |
| 6 小结 | 第43-44页 |
| 全文结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-48页 |
| Abstract | 第48-50页 |
| 致谢 | 第50页 |
