摘要 | 第1-10页 |
Abstract | 第10-12页 |
1 前言 | 第12-34页 |
·类病毒 | 第12-13页 |
·分类和结构 | 第13-16页 |
·分类 | 第13-15页 |
·结构 | 第15-16页 |
·复制和移动 | 第16-19页 |
·复制 | 第16-18页 |
·移动 | 第18-19页 |
·类病毒与寄主 | 第19-21页 |
·不同类病毒的寄主范围 | 第19页 |
·寄主特异性变异 | 第19-20页 |
·RNA 沉默在类病毒致病机制中的作用 | 第20-21页 |
·传播和防治 | 第21-23页 |
·传播 | 第21-22页 |
·防治 | 第22-23页 |
·类病毒检测方法 | 第23-29页 |
·生物学检测 | 第23页 |
·聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE) | 第23-25页 |
·聚合酶链式反应(RT-PCR) | 第25-27页 |
·核酸杂交 | 第27-29页 |
·锦紫苏类病毒研究现状 | 第29-32页 |
·本研究的目的及意义 | 第32-34页 |
2 材料和方法 | 第34-48页 |
·材料 | 第34-35页 |
·载体和菌种 | 第34-35页 |
·仪器 | 第35页 |
·试剂 | 第35页 |
·方法 | 第35-48页 |
·类病毒提取方法(LiCl 法和 Sap-direct 法) | 第35-36页 |
·反转录-聚合酶链式反应(RT-PCR) | 第36-39页 |
·PCR 产物的纯化 | 第39-40页 |
·连接 | 第40页 |
·DH5α感受态细胞的制备 | 第40-41页 |
·转化 | 第41页 |
·阳性克隆的筛选 | 第41页 |
·序列分析 | 第41页 |
·地高辛标记 RNA 探针的制备 | 第41-43页 |
·斑点杂交 | 第43-45页 |
·聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE) | 第45-48页 |
3 锦紫苏类病毒的两种快速检测方法 | 第48-60页 |
·Sap-direct RT-PCR 法 | 第48-52页 |
·前言 | 第48页 |
·样品来源 | 第48页 |
·不同稀释梯度下类病毒的检测结果 | 第48-49页 |
·不同组织中类病毒的检测结果 | 第49-51页 |
·Sap-direct RT-PCR 法与斑点杂交法比较 | 第51页 |
·结论 | 第51-52页 |
·通用探针快速杂交法 | 第52-60页 |
·前言 | 第52-53页 |
·样品来源 | 第53页 |
·8CCR 探针的灵敏度 | 第53-54页 |
·8CCR 探针的可靠性 | 第54-55页 |
·批量检测结果 | 第55-57页 |
·结论 | 第57-60页 |
4 锦紫苏类病毒发生分布调查 | 第60-66页 |
·样品来源 | 第60-61页 |
·检测结果 | 第61-63页 |
·锦紫苏类病毒在中国、印度和印度尼西亚的首次报道 | 第63-64页 |
·CbVd-2 在中国的首次报道 | 第63页 |
·CbVd-3 在中国的首次报道 | 第63页 |
·CbVd-1 在印度尼西亚的首次报道 | 第63页 |
·CbVd-5 在印度和印度尼西亚的首次报道 | 第63-64页 |
·结论 | 第64-66页 |
5 锦紫苏类病毒与寄主 | 第66-74页 |
·前言 | 第66-67页 |
·方法 | 第67-68页 |
·侵染性克隆的构建及 RNA 体外转录 | 第67页 |
·体外转录产物接种 | 第67页 |
·类病毒 RNA 提取 | 第67-68页 |
·接种植物中 CbVds 的检测 | 第68页 |
·CbVd-5 和 CbVd-6 种传实验 | 第68页 |
·克隆测序及序列分析 | 第68页 |
·结果 | 第68-72页 |
·CbVds 侵染性克隆的构建 | 第68-69页 |
·CbVds 二倍体体外转录产物的侵染性 | 第69页 |
·CbVds 子代序列分析 | 第69-72页 |
·CbVd-5 和 CbVd-6 种传实验结果 | 第72页 |
·结论 | 第72-74页 |
6 全文总结 | 第74-76页 |
·CbVds 快速检测方法的建立 | 第74页 |
·CbVds 发生分布调查 | 第74-75页 |
·锦紫苏类病毒与寄主 | 第75-76页 |
参考文献 | 第76-92页 |
附录 1 个人简介 | 第92-94页 |
致谢 | 第94页 |