| 基金项目 | 第1-4页 |
| 摘要 | 第4-8页 |
| Abstract | 第8-13页 |
| 缩略词表 | 第13-19页 |
| 引言 | 第19-20页 |
| 第1章 文献研究 | 第20-32页 |
| ·吴茱萸的本草考证 | 第20-23页 |
| ·药用历史与命名 | 第20-21页 |
| ·资源分布 | 第21页 |
| ·吴茱萸植物形态特征与品种鉴别 | 第21-22页 |
| ·吴茱萸性味功效与应用 | 第22-23页 |
| ·吴茱萸植物种质资源多样性研究 | 第23-26页 |
| ·形态学标记 | 第23页 |
| ·细胞学分析 | 第23-24页 |
| ·DNA分子标记 | 第24-25页 |
| ·DNA条形码 | 第25-26页 |
| ·干旱胁迫环境下植物细胞渗透调节物质和活性氧(ROS)清除系统及SOD研究 | 第26-29页 |
| ·植物对干旱的适应机制 | 第26-27页 |
| ·植物SOD研究 | 第27-29页 |
| ·吴茱萸中药化学质量评价研究 | 第29-31页 |
| ·吴茱萸中药化学成分研究 | 第29页 |
| ·吴茱萸化学指纹图谱研究 | 第29-31页 |
| ·问题的引出和本研究目的意义 | 第31-32页 |
| 第2章 吴茱萸种质资源遗传多样性ISSR分析研究 | 第32-51页 |
| ·实验材料 | 第32-35页 |
| ·供试材料 | 第32-34页 |
| ·主要试剂 | 第34页 |
| ·主要仪器设备 | 第34-35页 |
| ·实验用引物 | 第35页 |
| ·实验方法 | 第35-37页 |
| ·吴茱萸叶片基因组DNA提取 | 第35-36页 |
| ·ISSR-PCR反应体系 | 第36页 |
| ·PCR扩增程序 | 第36页 |
| ·ISSR引物筛选 | 第36页 |
| ·电泳检测 | 第36页 |
| ·数据处理与统计分析 | 第36-37页 |
| ·结果与分析 | 第37-47页 |
| ·样品基因组DNA检测 | 第37页 |
| ·ISSR-PCR反应体系优化 | 第37-41页 |
| ·吴茱萸ISSR-PCR扩增结果 | 第41-42页 |
| ·吴茱萸遗传多样性分析 | 第42-44页 |
| ·遗传分化和基因流分析 | 第44-45页 |
| ·遗传相似度和遗传距离 | 第45-46页 |
| ·UPGMA聚类分析 | 第46-47页 |
| ·讨论 | 第47-51页 |
| ·吴茱萸遗传多样性和遗传分化 | 第47-48页 |
| ·吴茱萸遗传背景差异与道地性的关系 | 第48页 |
| ·海拔高度、纬度等道地性关键因子与吴茱萸亲缘关系 | 第48-51页 |
| 第3章 吴茱萸ITS2序列研究 | 第51-58页 |
| ·实验材料 | 第51-53页 |
| ·供试材料 | 第51-52页 |
| ·主要试剂 | 第52-53页 |
| ·主要仪器设备 | 第53页 |
| ·实验用引物 | 第53页 |
| ·实验方法 | 第53-54页 |
| ·吴茱萸叶片基因组DNA提取 | 第53页 |
| ·吴茱萸ITS2条形码PCR扩增体系 | 第53页 |
| ·PCR扩增程序 | 第53-54页 |
| ·电泳检测 | 第54页 |
| ·序列测定 | 第54页 |
| ·结果与分析 | 第54-56页 |
| ·电泳检测结果 | 第54页 |
| ·ITS2序列分析 | 第54-55页 |
| ·遗传距离分析 | 第55页 |
| ·聚类分析 | 第55-56页 |
| ·讨论 | 第56-58页 |
| ·ITS2序列在吴茱萸及其种类变异鉴别方面的应用 | 第56-57页 |
| ·ISSR分子标记聚类与ITS2序列聚类结果不一致的探讨 | 第57-58页 |
| 第4章 吴茱萸HPLC指纹图谱研究 | 第58-78页 |
| ·实验材料 | 第58-60页 |
| ·供试材料 | 第58页 |
| ·主要试剂 | 第58-60页 |
| ·主要仪器设备 | 第60页 |
| ·实验方法 | 第60-63页 |
| ·供试品制备 | 第60页 |
| ·对照品溶液制备 | 第60-61页 |
| ·HPLC色谱条件 | 第61页 |
| ·对照品和典型样品HPLC色谱图 | 第61-63页 |
| ·结果与分析 | 第63-74页 |
| ·不同种和不同产地吴茱萸药材中吴茱萸碱等6种物质的含量 | 第63-66页 |
| ·方法学考察 | 第66-67页 |
| ·吴茱萸指纹图谱相似度评价 | 第67-71页 |
| ·不同种、不同产地吴茱萸之间的相似度比较 | 第71-73页 |
| ·HPLC指纹图谱的聚类 | 第73-74页 |
| ·讨论 | 第74-78页 |
| ·提取条件和色谱条件的确定 | 第74页 |
| ·吴茱萸药材中有效物质含量与地理海拔的关系 | 第74-75页 |
| ·不同品种和产地的吴茱萸药材指纹图谱分析 | 第75页 |
| ·HPLC指纹图谱聚类 | 第75-76页 |
| ·HPLC指纹图谱聚类、ISSR分子标记聚类和DNA条形码聚类相关性探讨 | 第76-78页 |
| 第5章 干旱胁迫下吴茱萸生理生化指标变化研究 | 第78-100页 |
| ·实验材料 | 第79页 |
| ·供试材料 | 第79页 |
| ·主要试剂 | 第79页 |
| ·主要仪器设备 | 第79页 |
| ·实验方法 | 第79-83页 |
| ·吴茱萸叶片可溶性蛋白提取 | 第79页 |
| ·吴茱萸叶片可溶性蛋白含量测定 | 第79-80页 |
| ·吴茱萸叶片可溶性糖含量测定 | 第80页 |
| ·吴茱萸叶片游离脯氨酸含量测定 | 第80-81页 |
| ·吴茱萸叶片丙二醛(MDA)含量测定 | 第81-82页 |
| ·吴茱萸叶片超氧化物歧化酶(SOD)活性测定 | 第82页 |
| ·吴茱萸叶片过氧化氢酶(CAT)活性测定 | 第82-83页 |
| ·吴茱萸叶片过氧化物酶(POD)活性测定 | 第83页 |
| ·生理生化数据处理和分析 | 第83页 |
| ·结果与分析 | 第83-97页 |
| ·不同程度干旱胁迫及复水过程对叶片可溶性蛋白含量的变化 | 第83-84页 |
| ·不同程度干旱胁迫及复水过程对叶片可溶性糖含量的变化 | 第84-85页 |
| ·不同程度干旱胁迫及复水过程对叶片游离脯氨酸含量的变化 | 第85-86页 |
| ·不同程度干旱胁迫及复水过程对叶片MDA含量的变化 | 第86-87页 |
| ·不同程度干旱胁迫及复水过程对叶片SOD活性的变化 | 第87-88页 |
| ·不同程度干旱胁迫及复水过程对叶片CAT活性的变化 | 第88-89页 |
| ·不同程度干旱胁迫及复水过程对叶片POD活性的变化 | 第89-97页 |
| ·讨论 | 第97-100页 |
| ·干旱胁迫及复水过程植物细胞渗透调节物质变化 | 第97-98页 |
| ·干旱胁迫及复水过程植物细胞活性氧清除系统变化 | 第98-100页 |
| 第6章 吴茱萸SOD基因克隆研究 | 第100-129页 |
| ·实验材料 | 第100-103页 |
| ·供试材料 | 第100-101页 |
| ·主要试剂 | 第101页 |
| ·主要仪器设备 | 第101-102页 |
| ·实验用引物 | 第102-103页 |
| ·实验方法 | 第103-111页 |
| ·吴茱萸Cu/Zn-SOD基因和Mn/Fe-SOD基因片段克隆 | 第103-107页 |
| ·吴茱萸SOD基因全长cDNA克隆 | 第107-111页 |
| ·结果与分析 | 第111-125页 |
| ·不同方法提取的总RNA检测 | 第111-112页 |
| ·吴茱萸SOD基因片段克隆及序列分析 | 第112-114页 |
| ·吴茱萸SOD基因片段SNP分析 | 第114-117页 |
| ·吴茱萸Cu/Zn-SOD基因cDNA全长克隆和序列分析 | 第117-121页 |
| ·吴茱萸Mn/Fe-SOD基因cDNA全长克隆和序列分析 | 第121-125页 |
| ·讨论 | 第125-129页 |
| ·吴茱萸叶片总RNA提取 | 第125-126页 |
| ·吴茱萸SOD基因片段克隆和SNP分析 | 第126-127页 |
| ·吴茱萸Cu/Zn-SOD基因全长cDNA克隆 | 第127页 |
| ·吴茱萸Mn/Fe-SOD基因全长cDNA克隆 | 第127-129页 |
| 结论与展望 | 第129-132页 |
| 参考文献 | 第132-142页 |
| 图版 | 第142-144页 |
| 附录 | 第144-158页 |
| 在校期间发表论文情况 | 第158-159页 |
| 致谢 | 第159-160页 |
| 统计学证明 | 第160页 |
