| 论文摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-12页 |
| 一 文献综述 | 第12-32页 |
| 1 衰老和mtDNA氧化损伤概述 | 第12-17页 |
| ·线粒体DNA(mtDNA)概述 | 第12-13页 |
| ·mtDNA氧化损伤机理 | 第13-15页 |
| ·8-OH-dG与mtDNA氧化损伤 | 第15-16页 |
| ·耐力运动与肝脏mtDNA氧化损伤 | 第16-17页 |
| 2 衰老、mtDNA氧化损伤与细胞凋亡 | 第17-19页 |
| ·细胞凋亡是生命有机体的自主选择 | 第18页 |
| ·细胞凋亡的发生取决于相关拮抗基因的调控 | 第18-19页 |
| ·细胞凋亡本身具有两面性,应一分为二地看待它 | 第19页 |
| ·细胞凋亡的重要生理功能 | 第19页 |
| ·细胞凋亡同时会诱发许多疾病 | 第19页 |
| 3 Caspase等相关酶与细胞凋亡 | 第19-26页 |
| ·细胞凋亡的生化机制 | 第20-21页 |
| ·Caspase依赖的细胞凋亡 | 第21-23页 |
| ·Caspase-3与细胞凋亡 | 第23-24页 |
| ·Caspase-8与细胞凋亡 | 第24-26页 |
| ·Caspase-9与细胞凋亡 | 第26页 |
| 4 促凋亡基因Puma | 第26-27页 |
| ·概述 | 第26页 |
| ·Puma与细胞凋亡信号通路 | 第26-27页 |
| 5 促凋亡基因Bax | 第27-29页 |
| ·Bax的结构、分布与功能 | 第28页 |
| ·Bax的促凋亡的可能机制 | 第28-29页 |
| 6 耐力运动与肝脏细胞凋亡 | 第29-32页 |
| 二 实验部分 | 第32-53页 |
| 1 前言 | 第32-33页 |
| 2 材料与方法 | 第33-41页 |
| ·实验对象 | 第33页 |
| ·动物实验模型介绍 | 第33-34页 |
| ·主要试剂 | 第34页 |
| ·主要仪器及耗材 | 第34-35页 |
| ·动物的处死和取材 | 第35页 |
| ·蛋白指标检测 | 第35-38页 |
| ·肝脏线粒体的提取分离 | 第35页 |
| ·指标检测 | 第35-36页 |
| ·肝组织8-OH-dG含量的相关ELISA检测和Caspase-3,Caspase-8,Caspase-9活性检测 | 第36-38页 |
| ·实时荧光定量PCR检测Puma、Bax的基因转录 | 第38-41页 |
| ·肝组织总RNA提取 | 第38-39页 |
| ·总RNA含量和纯度检测 | 第39页 |
| ·RNA逆转录 | 第39-40页 |
| ·扩增引物 | 第40页 |
| ·荧光定量PCR | 第40-41页 |
| ·统计学分析 | 第41页 |
| 3 结果 | 第41-48页 |
| ·耐力训练对小鼠体重的影响 | 第41-42页 |
| ·耐力训练对小鼠肝脏8-OH-dG的影响 | 第42-43页 |
| ·耐力训练对小鼠肝脏线粒体膜电位的影响 | 第43页 |
| ·耐力训练对小鼠肝脏线粒体ROS的影响 | 第43-44页 |
| ·耐力训练对小鼠肝脏Caspase-3活性的影响 | 第44-45页 |
| ·耐力训练对小鼠肝脏Caspase-8活性的影响 | 第45页 |
| ·耐力训练对小鼠肝脏Caspase-9活性的影响 | 第45-46页 |
| ·耐力训练对小鼠肝脏Puma基因转录的影响 | 第46-47页 |
| ·耐力训练对小鼠肝脏Bax基因转录的影响 | 第47-48页 |
| 4 分析与讨论 | 第48-52页 |
| ·耐力训练对小鼠体重的影响 | 第48页 |
| ·耐力训练对小鼠肝脏线粒体ROS和膜电位及8-OH-dG含量的影响 | 第48-50页 |
| ·耐力训练对小鼠肝脏Caspase-3、Caspase-8、Caspase-9活性的影响 | 第50-51页 |
| ·耐力训练对小鼠肝脏促凋亡基因Puma和Bax的转录的影响 | 第51-52页 |
| 5 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-60页 |
| 后记 | 第60页 |
