| 英文缩写表 | 第1-4页 |
| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-9页 |
| 前言 | 第9-26页 |
| 1 锌指蛋白简介 | 第9-15页 |
| ·锌指蛋白基因家族 | 第10-11页 |
| ·锌指蛋白基因的结构和功能 | 第11-15页 |
| 2 MAPK 信号通路简介 | 第15-23页 |
| ·MAPK 家族 | 第15-18页 |
| ·MAPK 的特异性激活机制 | 第18-19页 |
| ·MAPK 信号途径的功能 | 第19-23页 |
| 3 AP-2家族的简介 | 第23-26页 |
| ·AP-2的定位及其功能 | 第24-26页 |
| 第一部分 材料与方法 | 第26-44页 |
| 1 材料 | 第26-31页 |
| ·菌种和细胞株 | 第26页 |
| ·载体和工具酶 | 第26页 |
| ·抗体 | 第26页 |
| ·试剂盒 | 第26页 |
| ·其它试剂 | 第26-27页 |
| ·所需溶液 | 第27-30页 |
| ·主要仪器设备 | 第30-31页 |
| 2 实验方法 | 第31-44页 |
| ·CHIP 技术分析 AP-2α和 DNA 相互作用片段 | 第31-33页 |
| ·细胞培养 | 第33-34页 |
| ·萤光素酶实验验证 AP-2结合 DNA 片段 | 第34-37页 |
| ·凝胶电泳迁移率实验(EMSA) | 第37-40页 |
| ·Real-time PCR | 第40-42页 |
| ·萤光素酶实验验证 AP-2α能够影响 MAPK | 第42-43页 |
| ·对 ZNF256的初步研究 | 第43-44页 |
| 第二部分 结果分析 | 第44-54页 |
| 1 CHIP 技术分析 AP-2α相互作用 DNA 片段 | 第44页 |
| 2 AP-2α结合 DNA 片段的分析和验证 | 第44-47页 |
| ·萤光素酶实验检测 AP-2α结合区域 | 第44-45页 |
| ·确定 DNA 片段中 AP-2α结合位点 | 第45-46页 |
| ·凝胶电泳迁移率实验确定 AP-2α结合位点 | 第46-47页 |
| 3 AP-2α调控 ZNF256表达 | 第47-48页 |
| 4 AP-2α与 MAPK 信号通路 | 第48-52页 |
| ·ZNF256是转录抑制因子 | 第49-50页 |
| ·ZNF256抑制 AP1、SRE | 第50-51页 |
| ·AP-2可能增强 ZNF256对 AP1、SRE 的抑制 | 第51-52页 |
| 5 ZNF256的初步研究 | 第52-54页 |
| ·ZNF256各种细胞和组织表达谱的鉴定 | 第52-53页 |
| ·ZNF256的亚细胞定位 | 第53-54页 |
| 第三部分 讨论 | 第54-61页 |
| 参考文献 | 第61-71页 |
| 附录:攻读硕士学位期间发表的学术论文目录 | 第71-73页 |
| 致谢 | 第73-75页 |
