| 中文摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-19页 |
| 前言 | 第19-22页 |
| 第一章 大鼠急性脑静脉性血栓形成模型的建立 | 第22-26页 |
| ·材料与方法 | 第22-23页 |
| ·实验动物分组及术前准备 | 第22页 |
| ·急性脑静脉闭塞模型制备的手术操作 | 第22-23页 |
| ·术中动脉血压及血气监测 | 第23页 |
| ·统计学处理 | 第23页 |
| ·结果 | 第23-24页 |
| ·讨论 | 第24-26页 |
| ·建立急性脑静脉性血栓形成动物模型的原理 | 第24页 |
| ·大鼠静脉闭塞模型与其他动物模型的比较 | 第24-25页 |
| ·此种建立模型方法的优点 | 第25页 |
| ·此种建立模型方法尚存在的缺点 | 第25-26页 |
| 第二章 大鼠急性脑静脉性血栓形成模型的MR成像 | 第26-37页 |
| ·实验动物分组 | 第26页 |
| ·MR设备及成像方法 | 第26页 |
| ·MR图像的后处理及参数计算 | 第26-27页 |
| ·MR图像的后处理 | 第27页 |
| ·ROI的选取及MR指标的重复测量 | 第27页 |
| ·参数的计算 | 第27页 |
| ·统计学处理 | 第27页 |
| ·MR成像结果 | 第27-32页 |
| ·MRV成像 | 第27-28页 |
| ·MR功能成像 | 第28-32页 |
| ·讨论 | 第32-37页 |
| ·大鼠急性静脉性血栓形成模型建立的验证 | 第32-33页 |
| ·DWI成像与脑水肿的关系 | 第33-34页 |
| ·PWI成像与脑血流量的关系 | 第34-37页 |
| 第三章 大鼠急性脑静脉性血栓形成模型病理和免疫组织化学表现 | 第37-53页 |
| ·大鼠脑梗塞灶的测定 | 第37页 |
| ·脑含水量及脑指数测定 | 第37页 |
| ·组织病理及超微病理学观察 | 第37-38页 |
| ·光镜观察 | 第37页 |
| ·电镜观察 | 第37-38页 |
| ·免疫组织化学检查方法与技术 | 第38-39页 |
| ·CD34免疫组织化学染色 | 第38页 |
| ·VEGF免疫组织化学染色 | 第38页 |
| ·凋亡细胞的检测 | 第38-39页 |
| ·统计学分析 | 第39页 |
| ·肉眼和组织学检查所见 | 第39-50页 |
| ·大体标本肉眼所见 | 第39页 |
| ·组织病理及超微病理学观察结果 | 第39-46页 |
| ·组织病理学观察结果 | 第39-43页 |
| ·超微病理学观察结果 | 第43-46页 |
| ·组织化学染色结果 | 第46-49页 |
| ·脑含水量测定结果 | 第49页 |
| ·TTC染色结果 | 第49-50页 |
| ·讨论 | 第50-53页 |
| 第四章 大鼠急性脑静脉血栓模型的MR成像与病理学对照 | 第53-61页 |
| ·统计学分析 | 第53页 |
| ·结果 | 第53-57页 |
| ·CVT PWI rCBV图表现及其免疫组化 MVD结果的相关性 | 第53-54页 |
| ·CVT DWI ADC值及其免疫组化凋亡指数的相关性 | 第54-55页 |
| ·CVT DWI ADC值及其免疫组化 VEGF结果的相关性 | 第55-56页 |
| ·CVT TTC染色病灶面积与ADC图病灶面积间的差异 | 第56-57页 |
| ·讨论 | 第57-59页 |
| ·CVT功能成像表现与分子生物学结果的相关性 | 第57-58页 |
| ·对 CVT的病理生理学机制的推断 | 第58-59页 |
| ·结论 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-70页 |
| 综述 | 第70-77页 |
| 缩略语 | 第77-79页 |
| 成果 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
| 第一军医大学学位论文原创性声明 | 第81页 |
| 学位论文版权使用授权书 | 第81页 |
