中文摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-10页 |
英文缩略语索引 | 第10-11页 |
前言 | 第11-16页 |
研究现状、成果 | 第11-15页 |
研究目的、方法 | 第15-16页 |
材料与方法 | 第16-26页 |
1.主要实验仪器 | 第16页 |
2.实验材料 | 第16-17页 |
·病例的选择 | 第16页 |
·胶质母细胞瘤细胞系的选择 | 第16页 |
·生物信息学预测软件及网站资源 | 第16-17页 |
3.主要试剂 | 第17页 |
4.实验方法 | 第17-25页 |
·组织微阵列的制备 | 第17页 |
·锁定核苷酸探针原位杂交 | 第17-19页 |
·免疫组织化学染色 | 第19-20页 |
·细胞培养、转染及分组 | 第20页 |
·qRT-PCR检测细胞中miR-218的量 | 第20-22页 |
·免疫细胞化学染色 | 第22-23页 |
·细胞凋亡的单细胞凝胶电泳检测 | 第23-24页 |
·MTT测定U87MG细胞的生存状况 | 第24-25页 |
5.统计学方法 | 第25-26页 |
结果 | 第26-34页 |
1.对照组脑组织及各胶质瘤组miR-218表达状况的检测 | 第26-27页 |
2.对照组脑组织及各胶质瘤组CDK6表达状况的检测 | 第27-28页 |
3.对照组脑组织及各胶质瘤组Ki-67表达状况的检测 | 第28-29页 |
4.对照组及各胶质瘤组miR-218与CDK6表达和增殖活性的关系 | 第29页 |
5.miR-218靶基因的生物信息学预测 | 第29-30页 |
6.对照组及mimics组U87MG细胞中miR-218含量的检测 | 第30-31页 |
7.对照组及mimics组U87MG细胞中CDK6及Ki-67表达的检测 | 第31-32页 |
8.对照组及mimics组U87MG凋亡细胞的检测 | 第32-33页 |
9.对照组及mimics组U87MG细胞生存状况的MTT检测 | 第33-34页 |
讨论 | 第34-39页 |
1.胶质瘤细胞的miR-218表达变化 | 第34-35页 |
2.胶质瘤细胞的CDK6表达变化 | 第35-36页 |
3.胶质瘤细胞miR-218和CDK6表达及增殖活性的相互关系 | 第36-37页 |
4.胶质瘤细胞miR-218表达异常影响其增殖及凋亡的机制验证 | 第37-39页 |
结论 | 第39-40页 |
参考文献 | 第40-44页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第44-45页 |
综述 microRNA与胶质瘤相关性研究进展 | 第45-61页 |
综述参考文献 | 第54-61页 |
致谢 | 第61页 |