| 综述:根瘤菌信号分子—结瘤因子的研究进展 | 第1-48页 |
| 引言 | 第7-48页 |
| 1 结瘤因子的结构、合成、分泌及降解 | 第8-18页 |
| ·结瘤因子的结构 | 第8-10页 |
| ·结瘤因子的合成 | 第10-16页 |
| ·结瘤因子的分泌 | 第16-17页 |
| ·结瘤因子的降解 | 第17-18页 |
| 2. 宿主植物感受结瘤因子信号 | 第18-26页 |
| ·结瘤因子的本质和特性 | 第18-19页 |
| ·结瘤因子感受的定位及敏感性 | 第19-20页 |
| ·宿主植物对结瘤因子的应答反应 | 第20-26页 |
| 3. 结瘤因子的受体研究 | 第26-29页 |
| ·结合因子的结合位点NF851 和NF852 | 第26-27页 |
| ·凝集素 | 第27页 |
| ·结瘤因子受体基因 | 第27-29页 |
| ·结瘤因子受体激酶 | 第29页 |
| 4. 结瘤因子信号传导途径 | 第29-33页 |
| ·进入受体和信号受体参与的结瘤因子信号传导途径 | 第29-31页 |
| ·Ca~(2+)和G 蛋白参与的结瘤因子信号传导途径 | 第31-33页 |
| ·建立在豆科植物结瘤突变体基础上的结瘤因子信号传导模式 | 第33页 |
| 5. 结瘤因子信号的反馈调节 | 第33-34页 |
| 6. 非豆科植物感受结瘤因子信号的研究 | 第34-35页 |
| 结束语 | 第35-37页 |
| 参考文献 | 第37-48页 |
| 论文第一部分:水稻中结瘤素基因的表达及其同源序列的分析 | 第48-87页 |
| 第一章 大豆早期结瘤素基因enod28 启动子在水稻中的表达受结瘤因子诱导 | 第49-74页 |
| 摘要 | 第49-52页 |
| 引言 | 第52-54页 |
| 材料与方法 | 第54-64页 |
| 1. 植物材料 | 第54页 |
| 2. 菌株和质粒 | 第54页 |
| 3. 酶及生化试剂 | 第54页 |
| 4. 细菌培养基 | 第54-55页 |
| 5. 水稻遗传转化所用培养基 | 第55页 |
| 6. 质粒DNA 的提取和转化 | 第55-57页 |
| 7. DNA 凝胶电泳和回收 | 第57页 |
| 8. 水稻叶片总DNA 提取 | 第57-58页 |
| 9. Southern blot 分析 | 第58-60页 |
| 10. 双元载体导入根癌农杆菌及其鉴定 | 第60-61页 |
| 11. 农杆菌介导转化水稻幼胚愈伤组织及转基因植株的再生 | 第61-62页 |
| 12. 根瘤菌NGR234 结瘤因子NodNGR factors 的提取 | 第62-63页 |
| 13. 转基因水稻植株的生长条件和NodNGR factors 的处理 | 第63页 |
| 14. GUS 活性的组织化学定位 | 第63-64页 |
| 结果与讨论 | 第64-72页 |
| 1. 水稻遗传转化重组质粒的构建 | 第64页 |
| 2. Gmenod28P-GUS 嵌合基因的构建 | 第64-65页 |
| 3. 根癌农杆菌介导的水稻遗传转化和植株再生 | 第65页 |
| 4. 携带Gmenod28P-GUS 融合基因的水稻转基因植株的PCR 鉴定 | 第65-67页 |
| 5. 转基因植株的Southern blot 分析 | 第67-68页 |
| 6. 转基因水稻中嵌合基因Gmenod28P-GUS 的表达特性 | 第68-71页 |
| 7. 水稻基因组中存在Gmenod28 的同源基因 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-74页 |
| 第二章 水稻中结瘤素基因的同源基因的研究 | 第74-87页 |
| 摘要 | 第74-76页 |
| 引言 | 第76页 |
| 方法 | 第76-77页 |
| 结果与讨论 | 第77-85页 |
| 1. 核酸数据库中检索到的豆科植物结瘤素基因 | 第77页 |
| 2. 水稻基因组中存在结瘤素基因的同源基因 | 第77-82页 |
| 3. 与水稻基因组比对不具有同源性的结瘤素基因 | 第82页 |
| 4. 讨论 | 第82-85页 |
| 参考文献 | 第85-87页 |
| 论文第二部分:Medicago truncatula 遗传转化和再生体系的研究 | 第87-123页 |
| 第一章 根癌农杆菌介导的 Medicago truncatula 子叶节外植体转化系统的研究 | 第88-109页 |
| 摘要 | 第88-93页 |
| 材料与方法 | 第93-95页 |
| 1. 植物材料和外植体的准备 | 第93页 |
| 2. 组织培养和转化过程中所使用的培养基 | 第93页 |
| 3. 根癌农杆菌菌株、质粒和侵染用农杆菌的制备 | 第93-94页 |
| 4. 植株转化和再生 | 第94页 |
| 5. 转基因植株GUS 活性的组织化学染色检测 | 第94-95页 |
| 结果与讨论 | 第95-107页 |
| 1. 高效植株再生体系的建立 | 第95-102页 |
| 2. 根癌农杆菌介导的Medicago truncatula 子叶节外植体转化系统 | 第102-105页 |
| 3. 讨论 | 第105-107页 |
| 参考文献 | 第107-109页 |
| 第二章 经体胚发生途径的Medicago truncatula 植株再生体系的研究 | 第109-117页 |
| 摘要 | 第109-111页 |
| 材料与方法 | 第111-112页 |
| 1. 植物材料 | 第111-112页 |
| 2. 组织培养所使用的培养基 | 第112页 |
| 3. 体胚发生和植株再生 | 第112页 |
| 结果与讨论 | 第112-116页 |
| 1. 外植体和愈伤诱导培养基激素组合条件的优化 | 第112-113页 |
| 2. 体胚的发生和植株再生 | 第113-115页 |
| 3. 经体细胞胚发生途径的植株再生体系 | 第115页 |
| 4. 讨论 | 第115-116页 |
| 参考文献 | 第116-117页 |
| 第三章 Medicago truncatula 细胞悬浮培养的研究 | 第117-123页 |
| 摘要 | 第117-119页 |
| 材料与方法 | 第119-120页 |
| 结果与讨论 | 第120-122页 |
| 参考文献 | 第122-123页 |
| 总结与展望 | 第123-125页 |
| 发表文章目录 | 第125-126页 |
