| 文献综述 | 第1-19页 |
| 1 芜菁花叶病毒研究进展 | 第12-17页 |
| ·TuMV的生物学和理化特性 | 第12-13页 |
| ·TuMV的结构 | 第13页 |
| ·TuMV的侵染和繁殖 | 第13-15页 |
| ·TuMV的变异 | 第15-17页 |
| 2 病毒侵染对寄主植物叶绿体和光合作用等生理过程的影响 | 第17-19页 |
| 第一部分 TuMV的分离纯化及其生物学特性 | 第19-33页 |
| 1 材料与方法 | 第19-22页 |
| ·毒源采集与保存 | 第19页 |
| ·病毒的接种方法(常规汁液摩擦接种法) | 第19页 |
| ·病毒的分离纯化 | 第19-20页 |
| ·寄主反应测定 | 第20页 |
| ·侵染反应 | 第20-22页 |
| ·材料 | 第21页 |
| ·接种 | 第21页 |
| ·病症观察 | 第21-22页 |
| 2 结果与分析 | 第22-31页 |
| ·TuMV分离纯化结果 | 第22-23页 |
| ·TuMV寄主反应 | 第23-24页 |
| ·侵染反应 | 第24-31页 |
| ·反应症状 | 第24-25页 |
| ·病情动态 | 第25-31页 |
| ·对十字花科蔬菜的侵染 | 第25-30页 |
| ·对茄科植物的侵染 | 第30页 |
| ·对藜科植物的侵染 | 第30-31页 |
| 3 讨论 | 第31-33页 |
| 第二部分 TuMV CP基因的克隆及其序列多态性分析 | 第33-50页 |
| 1 材料与方法 | 第33-39页 |
| ·植物材料、菌株与质粒 | 第33页 |
| ·主要化学试剂及酶类 | 第33-34页 |
| ·引物设计 | 第34页 |
| ·病毒RNA模板的制备: | 第34-35页 |
| ·RT-PCR扩增 | 第35-36页 |
| 1 ) cDNA第一链的合成 | 第35页 |
| 2 ) PCR反应 | 第35-36页 |
| ·试剂盒回收目的片段 | 第36页 |
| ·连接反应 | 第36-37页 |
| ·感受态细胞的制备和重组质粒的转化 | 第37页 |
| ·感受态细胞的制备(CaCl_2法) | 第37页 |
| ·重组质粒的转化 | 第37页 |
| ·重组质粒的筛选 | 第37-38页 |
| ·重组质粒的PCR鉴定 | 第38页 |
| ·碱法裂解提取质粒 | 第38-39页 |
| ·序列测定和分析 | 第39页 |
| 2 结果与分析 | 第39-48页 |
| ·RT-PCR结果 | 第39-40页 |
| ·重组质粒的PCR鉴定 | 第40页 |
| ·序列分析结果 | 第40-48页 |
| ·CP基因核苷酸序列分析 | 第43页 |
| ·CP基因氨基酸序列分析 | 第43页 |
| ·TuMV-CP分子水平上的系统进化 | 第43-48页 |
| 3 讨论 | 第48-50页 |
| 第三部分 榨菜植物感染TuMV后的生长特性、光合及叶绿素荧光的变化 | 第50-65页 |
| 1 材料与方法 | 第51-53页 |
| ·材料 | 第51页 |
| ·方法 | 第51-53页 |
| ·病毒的接种(常规汁液摩擦接种法) | 第51页 |
| ·榨菜叶片数和株高测量 | 第51页 |
| ·榨菜叶面积测量 | 第51页 |
| ·植株各部分的鲜重和干重测量 | 第51-52页 |
| ·叶绿素的提取 | 第52页 |
| ·光合作用参数的测定 | 第52页 |
| ·光响应曲线的测定 | 第52页 |
| ·叶片荧光动力学参数的测定 | 第52-53页 |
| 2 结果与分析 | 第53-63页 |
| ·TuMV侵染对榨菜植株生长的影响 | 第53-56页 |
| ·对榨菜叶片数和株高的影响 | 第53-54页 |
| ·对榨菜叶面积的影响 | 第54-55页 |
| ·对榨菜鲜重和干重的影响 | 第55-56页 |
| ·TuMV侵染对叶绿素含量的影响 | 第56-58页 |
| ·榨菜叶绿素a、叶绿素b | 第56-57页 |
| ·对总叶绿素含量和叶绿素a／b比值的影响 | 第57-58页 |
| ·TuMV侵染对榨菜叶片光合作用及叶绿素荧光参数的影响 | 第58-60页 |
| ·净光合速率和光响应曲线的比较 | 第58-59页 |
| ·对气体交换指标的影响 | 第59-60页 |
| ·TuMV侵染对榨菜叶片对叶绿素荧光参数的影响 | 第60-63页 |
| ·对叶片Fv／Fm、Fv'／Fm'的影响 | 第60-61页 |
| ·对叶片qP、qN和AES的影响 | 第61-63页 |
| 3 讨论 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-72页 |
| 附录 | 第72-76页 |
