英文缩略词表 | 第1-9页 |
中文摘要 | 第9-14页 |
Abstract | 第14-20页 |
葛根素通过细胞凋亡途径干预帕金森病模型的研究 | 第20-99页 |
1 前言 | 第20-25页 |
研究一 葛根素对MPP~+诱导的SH-SY5Y 细胞凋亡的保护作用 | 第25-42页 |
2 材料与方法 | 第25-34页 |
·葛根素及其药液的配制 | 第25页 |
·细胞株 | 第25页 |
·主要试剂 | 第25-27页 |
·主要溶液配制 | 第27-29页 |
·主要仪器 | 第29-30页 |
·细胞培养和传代 | 第30页 |
·细胞冻存 | 第30页 |
·细胞复苏 | 第30-31页 |
·细胞计数方法 | 第31页 |
·相差显微镜下观察培养的细胞形态 | 第31页 |
·台盼蓝染色检测细胞活性 | 第31页 |
·线粒体膜电位检测 | 第31-32页 |
·ELISA 检测胞浆细胞色素C 的含量 | 第32页 |
·Western blotting 检测胞浆Cyt C 的表达 | 第32-33页 |
·Caspase-3,Caspase-8 和Caspase-9 酶活性的检测 | 第33-34页 |
·流式细胞术检测细胞凋亡率和细胞增殖周期 | 第34页 |
·DNA ladder 检测细胞凋亡 | 第34页 |
·统计学处理方法 | 第34页 |
3 结果 | 第34-42页 |
·不同剂量葛根素对 MPP~+诱导的 SH-SY5Y 细胞活性的影响 | 第34-36页 |
·线粒体膜电位检测结果 | 第36页 |
·细胞色素C 表达的变化 | 第36-37页 |
·流式细胞术检测细胞凋亡率 | 第37-38页 |
·DNA ladder 检测结果 | 第38-39页 |
·Caspase-3,9,8 酶的活性变化 | 第39-42页 |
研究二 葛根素对6-OHDA 诱导的帕金森病大鼠模型的保护作用 | 第42-99页 |
2. 材料与方法 | 第42-56页 |
·主要实验设备 | 第42-43页 |
·主要化学试剂 | 第43页 |
·主要实验溶液的配制 | 第43-44页 |
·动物造模 | 第44-46页 |
·立体定位注射6-OHDA | 第44-45页 |
·模型的行为学验证 | 第45页 |
·第二次分组和处理办法 | 第45-46页 |
·透射电镜观察 | 第46-47页 |
·组织病理学、免疫组织化学和原位杂交实验 | 第47-54页 |
·标本的留取和切片制备 | 第47-49页 |
·黑质致密区HE 病理染色 | 第49-50页 |
·黑质TH 免疫组化染色 | 第50-51页 |
·黑质Bax 和Bcl-2 蛋白的免疫组化染色 | 第51-52页 |
·黑质Tunel 细胞凋亡染色 | 第52-53页 |
·黑质TH-ISHH 原位杂交组化染色 | 第53-54页 |
·纹状体GDNF 免疫组化染色 | 第54页 |
·图像处理和统计学处理方法 | 第54-56页 |
3 结果 | 第56-72页 |
·行为学检测结果 | 第56页 |
·组织学结果 | 第56-72页 |
·电镜观察超微结构结果 | 第56-59页 |
·HE 染色结果 | 第59-60页 |
·黑质TH 免疫组化结果 | 第60-62页 |
·黑质TH mRNA 原位杂交结果 | 第62-64页 |
·黑质细胞Tunel 凋亡试验结果 | 第64-66页 |
·黑质Bcl-2 和Bax 免疫组化结果 | 第66-69页 |
·纹状体GDNF 免疫组化结果 | 第69-72页 |
4 讨论 | 第72-86页 |
·PD 的发病机制 | 第72-73页 |
·葛根素影响细胞凋亡的机制 | 第73-75页 |
·细胞凋亡与PD | 第75-82页 |
·线粒体是细胞凋亡的调节和控制中心 | 第75-78页 |
·Caspase 家族,Bcl-2 家族与PD 相关的细胞凋亡 | 第78-82页 |
·葛根素与PD 的关系 | 第82-84页 |
·GDNF 与PD 细胞凋亡 | 第84-85页 |
·结语和展望 | 第85-86页 |
5 结论 | 第86-87页 |
6 参考文献 | 第87-99页 |
附录 | 第99-100页 |
1 本人简历 | 第99页 |
2 在学期间的研究成果 | 第99-100页 |
致谢 | 第100-101页 |
综述 植物雌激素通过泛素-蛋白酶体系统干预帕金森病的研究进展 | 第101-114页 |