英汉缩略语名词对照 | 第1-9页 |
摘要 | 第9-16页 |
ABSTRACT | 第16-24页 |
前言 | 第24-30页 |
第一部分 早期维生素A 营养对大鼠成年期学习记忆功能的远期影响 | 第30-52页 |
1 材料和方法 | 第31-39页 |
·实验动物 | 第31-33页 |
·实验仪器和试剂 | 第33-36页 |
·主要仪器设备 | 第33-34页 |
·主要试剂 | 第34-35页 |
·主要试剂配制 | 第35-36页 |
·方法 | 第36-39页 |
·动物饲料制作 | 第36页 |
·Morris 水迷宫实验 | 第36-37页 |
·实验大鼠体重及脑重测定 | 第37页 |
·标本采集和准备 | 第37页 |
·血清维生素A 测定 | 第37-38页 |
·H-E 染色 | 第38页 |
·免疫组化 | 第38页 |
·电镜 | 第38-39页 |
·统计学处理 | 第39页 |
2 结果 | 第39-45页 |
·实验大鼠一般情况 | 第39页 |
·血清视黄醇水平监测 | 第39-40页 |
·生后8 周水迷宫行为学测试结果 | 第40-42页 |
·生后44 周水迷宫行为学测试结果 | 第42-44页 |
·脑组织/体重比重检测结果 | 第44页 |
·海马组织形态学观察结果 | 第44-45页 |
·海马组织超微结构观察结果 | 第45页 |
·MVAD 对仔鼠生后44 周海马组织内Aβ和APP 蛋白表达水平的影响 | 第45页 |
3 讨论 | 第45-50页 |
·边缘型维生素A 缺乏对大鼠学习记忆功能的远期影响 | 第45-47页 |
·持续边缘型维生素A 缺乏促进大鼠海马组织APP 蛋白表达增加 | 第47-48页 |
·早期维生素A 营养干预具有“窗口期” | 第48-50页 |
4 小结 | 第50-52页 |
第二部分 早期维生素A 营养对大鼠海马视黄酸代谢的影响 | 第52-74页 |
1 材料和方法 | 第52-63页 |
·实验动物 | 第52-53页 |
·实验仪器、药品及试剂 | 第53-55页 |
·主要仪器设备 | 第53-54页 |
·主要试剂 | 第54-55页 |
·主要试剂配制 | 第55页 |
·方法 | 第55-63页 |
·脑组织视黄醇浓度测定 | 第55-56页 |
·高效液相测定血清和脑组织RA 浓度 | 第56-59页 |
·定量RT-PCR 检测海马组织RA 合成分解代谢酶表达 | 第59-63页 |
·统计学处理 | 第63页 |
2 结果 | 第63-69页 |
·维生素A 营养对血清视黄醇浓度的影响(表2-2) | 第63-64页 |
·维生素A 营养对海马视黄醇浓度的影响(表2-2) | 第64-65页 |
·维生素A 营养对视黄酸浓度的影响 | 第65-68页 |
·VA 营养对RA 合成分解代谢酶mRNA 表达的影响 | 第68-69页 |
3 讨论 | 第69-73页 |
·不同维生素A 营养状态下海马视黄醇和视黄酸浓度能够保持稳定 | 第70-72页 |
·海马视黄酸合成分解代谢酶表达变化调控有利于维持海马RA浓度稳定 | 第72-73页 |
4 小结 | 第73-74页 |
第三部分 视黄酸受体与大鼠生后早期海马学习记忆功能发育 | 第74-86页 |
1 材料和方法 | 第75-78页 |
·实验动物 | 第75页 |
·实验仪器、药品及试剂 | 第75页 |
·方法 | 第75-78页 |
·定量RT-PCR 检测海马组织RA 合成分解代谢酶表达 | 第75-76页 |
·免疫荧光 | 第76-77页 |
·免疫组化 | 第77页 |
·统计学处理 | 第77-78页 |
2 结果 | 第78-81页 |
·海马发育过程中RARαmRNA 表达水平变化 | 第78页 |
·海马发育过程中各区RARα蛋白表达水平变化 | 第78页 |
·海马发育过程中各区RARα蛋白表达定位变化 | 第78-80页 |
·MVAD 对海马组织RARαmRNA 表达的影响 | 第80-81页 |
·M VAD 对海马组织RARα蛋白表达的影响 | 第81页 |
3 讨论 | 第81-85页 |
4 小结 | 第85-86页 |
全文总结 | 第86-89页 |
参考文献 | 第89-96页 |
论文图片资料 | 第96-104页 |
文献综述 | 第104-110页 |
致谢 | 第110-111页 |
攻读博士学位期间发表的文章及会议交流论文 | 第111页 |