| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 常用缩略词中英文对照表 | 第11-12页 |
| 引言 | 第12-15页 |
| 第一部分 不同温和灸作用时间对创面修复的作用 | 第15-24页 |
| 1.实验材料 | 第15页 |
| 1.1 实验动物 | 第15页 |
| 1.2 实验器材 | 第15页 |
| 1.3 实验试剂 | 第15页 |
| 2.实验方法 | 第15-18页 |
| 2.1 动物分组 | 第15-16页 |
| 2.2 建立SD大鼠括约肌损伤模型 | 第16页 |
| 2.3 温和灸治疗方法 | 第16页 |
| 2.4 肛门括约肌功能检测 | 第16-17页 |
| 2.5 肛门括约肌组织形态学检测 | 第17页 |
| 2.6 统计分析 | 第17-18页 |
| 3.结果 | 第18-22页 |
| 3.1 不同温和灸治疗时间对大鼠肛门括约肌压力的影响 | 第18-19页 |
| 3.2 不同温和灸治疗时间对大鼠肛门括约肌肌电的影响 | 第19-20页 |
| 3.3 不同温和灸治疗时间对大鼠肛门括约肌结构的影响 | 第20-22页 |
| 4.分析 | 第22-23页 |
| 5.结论 | 第23-24页 |
| 第二部分 温和灸联合骨髓间充质干细胞移植对大鼠损伤肛门括约肌结构和功能的影响 | 第24-48页 |
| 1.实验材料 | 第24-25页 |
| 1.1 实验动物 | 第24页 |
| 1.2 实验器材 | 第24-25页 |
| 1.3 实验试剂 | 第25页 |
| 1.4 实验试剂的配置 | 第25页 |
| 2.实验方法 | 第25-29页 |
| 2.1 动物分组 | 第25-26页 |
| 2.2 建立SD大鼠括约肌损伤模型 | 第26页 |
| 2.3 BMSCs/GFP的冻存 | 第26页 |
| 2.4 BMSCs/GFP的复苏、培养、传代 | 第26页 |
| 2.5 BMSCs/GFP的分选 | 第26-27页 |
| 2.6 温和灸及BMSCs治疗方法 | 第27页 |
| 2.7 大鼠肛门括约肌功能性检测 | 第27-28页 |
| 2.8 大鼠肛门括约肌组织形态学检测 | 第28-29页 |
| 2.9 统计分析 | 第29页 |
| 3.结果 | 第29-42页 |
| 3.1 BMSCs/GFP的荧光分析及鉴定 | 第29-30页 |
| 3.2 流式检测表面分子 | 第30-31页 |
| 3.3 大鼠肛门括约肌功能性检测 | 第31-37页 |
| 3.4 大鼠肛门括约肌组织形态学检测 | 第37-42页 |
| 4 分析与讨论 | 第42-48页 |
| 结论 | 第48-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-54页 |
| 附录 | 第54-95页 |
| 文献综述 骨髓间充质干细胞成肌分化在骨骼肌再生中的应用 | 第54-64页 |
| 参考文献 | 第59-64页 |
| 在校期间发表的学术论文 | 第64-95页 |
| 一种结肠癌干细胞上皮-间质转化分层模型的建立和验证 | 第64-80页 |
| A review:therapeutic potential of adipose-derived stem cells in cutaneous wound healing and regeneration | 第80-95页 |
| 在校期间承担/参与课题及参加学术会议等情况 | 第95页 |
