皮肤组织干燥保存的研究
| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-19页 |
| ·组织器官干燥保存技术 | 第10-15页 |
| ·组织器官干燥保存概念及发展 | 第10-12页 |
| ·干燥保存的研究内容 | 第12-15页 |
| ·干燥保存中存在的问题 | 第15页 |
| ·海藻糖的作用机制 | 第15-17页 |
| ·海藻糖简介 | 第15-16页 |
| ·海藻糖保护机理的假说 | 第16页 |
| ·海藻糖在组织器官保存中的应用前景 | 第16-17页 |
| ·本实验研究的目的、意义及实验内容 | 第17-19页 |
| ·目的与意义 | 第17-18页 |
| ·实验内容 | 第18-19页 |
| 第二章 试验材料与方法 | 第19-28页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第19-20页 |
| ·试剂 | 第19页 |
| ·试验仪器 | 第19页 |
| ·实验器械 | 第19-20页 |
| ·试剂的配制 | 第20-21页 |
| ·胎牛血清的储存和灭活 | 第20页 |
| ·DMEM培养基的配制 | 第20页 |
| ·MTT溶液的配制 | 第20页 |
| ·脱毛剂的配制 | 第20页 |
| ·无钙镁磷酸缓冲液[PBS(-)]的配制 | 第20-21页 |
| ·生理盐水的配制 | 第21页 |
| ·10%缓冲福尔马林固定液的配制 | 第21页 |
| ·试验方法 | 第21-28页 |
| ·蒽酮硫酸法 | 第21-23页 |
| ·苏木精—伊红(HE)染色方法 | 第23-24页 |
| ·透射电镜分析 | 第24-25页 |
| ·荧光标记 | 第25-26页 |
| ·MTT活性分析 | 第26-27页 |
| ·移植方法 | 第27页 |
| ·统计学分析 | 第27-28页 |
| 第三章 海藻糖导入组织过程的研究 | 第28-37页 |
| ·海藻糖导入细胞和组织的文献综述 | 第28-29页 |
| ·植物组织海藻糖的导入 | 第28页 |
| ·哺乳动物细胞中海藻糖的导入 | 第28-29页 |
| ·组织器官中海藻糖的导入 | 第29页 |
| ·海藻糖浓度对皮肤组织海藻糖导入的影响 | 第29-31页 |
| ·孵育温度对海藻糖导入量的影响 | 第31-33页 |
| ·孵育时间对海藻糖导入量的影响 | 第33-35页 |
| ·海藻糖导入皮肤组织的最佳条件 | 第35-37页 |
| 第四章 负载海藻糖皮肤组织的干燥保存 | 第37-52页 |
| ·干燥过程研究 | 第37-38页 |
| ·冻干研究 | 第37页 |
| ·吹干研究 | 第37-38页 |
| ·干燥皮肤不同保存条件及水化 | 第38-42页 |
| ·干燥皮肤保存条件 | 第38-41页 |
| ·水化过程 | 第41-42页 |
| ·干保存皮肤组织的活性研究 | 第42-52页 |
| ·结构研究 | 第42-44页 |
| ·荧光标记 | 第44-45页 |
| ·MTT活性分析 | 第45-46页 |
| ·自体移植 | 第46-52页 |
| 第五章 研究总结与展望 | 第52-54页 |
| ·结论 | 第52页 |
| ·本实验不足和展望 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-58页 |
| 攻读硕士学位期间取得的学术成果 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59页 |
