| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-11页 |
| 第一章 引言 | 第11-22页 |
| ·单性结实 | 第11-14页 |
| ·单性结实概念及分类 | 第11页 |
| ·几种植物单性结实的相关研究 | 第11-13页 |
| ·单性结实转基因研究 | 第13页 |
| ·温度和植物激素与单性结实的关系 | 第13-14页 |
| ·抑制差减杂交技术原理及其在植物差异表达研究中的应用 | 第14-20页 |
| ·SSH 原理 | 第14-15页 |
| ·SSH 技术的主要步骤 | 第15-16页 |
| ·SSH 技术在植物差异表达研究中应用 | 第16-20页 |
| ·研究目的与意义 | 第20页 |
| ·主要研究内容 | 第20-21页 |
| ·技术路线 | 第21-22页 |
| 第二章 差减 cDNA 文库的构建与序列分析 | 第22-49页 |
| ·试验材料 | 第22页 |
| ·试验材料 | 第22页 |
| ·主要生化试剂 | 第22页 |
| ·试验方法 | 第22-33页 |
| ·总RNA 的提取 | 第22-23页 |
| ·cDNA 合成 | 第23-26页 |
| ·SSH 文库的构建 | 第26-33页 |
| ·结果与分析 | 第33-46页 |
| ·总RNA 的提取 | 第33页 |
| ·cDNA 的合成 | 第33-34页 |
| ·SSH 文库的构建 | 第34-38页 |
| ·ESTs 序列分析 | 第38-45页 |
| ·功能分类 | 第45-46页 |
| ·讨论 | 第46-49页 |
| 第三章 候选基因的荧光定量PCR 分析 | 第49-56页 |
| ·试验材料 | 第49页 |
| ·试验材料 | 第49页 |
| ·主要生化试剂 | 第49页 |
| ·试验方法 | 第49-51页 |
| ·总RNA 提取 | 第49页 |
| ·cDNA 第一链的合成 | 第49页 |
| ·内参基因的筛选 | 第49-50页 |
| ·内参基因ubiquitin 标准曲线的绘制 | 第50页 |
| ·荧光定量PCR 检测 | 第50-51页 |
| ·结果与分析 | 第51-54页 |
| ·总RNA 的提取 | 第51页 |
| ·内参基因的筛选 | 第51-52页 |
| ·内参基因ubiquitin 标准曲线的绘制 | 第52-53页 |
| ·荧光定量PCR 分析候选基因的表达 | 第53-54页 |
| ·讨论 | 第54-56页 |
| 第四章 通过RACE 获得单性结实相关基因序列 | 第56-63页 |
| ·试验材料 | 第56页 |
| ·试验材料 | 第56页 |
| ·主要生化试剂 | 第56页 |
| ·试验方法 | 第56-58页 |
| ·总RNA 提取 | 第56页 |
| ·基因特异引物设计 | 第56页 |
| ·3’-RACE cDNA 的合成 | 第56-58页 |
| ·结果与分析 | 第58-62页 |
| ·总RNA 的提取 | 第58-59页 |
| ·3’- RACE PCR 扩增结果 | 第59页 |
| ·Putative Auxin Growth Promotor Protein 基因3’- RACE 序列分析 | 第59-62页 |
| ·讨论 | 第62-63页 |
| 第五章 全文结论 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 作者简历 | 第70-71页 |
| 项目资助 | 第71页 |