| 摘要 | 第1-13页 |
| Abstract | 第13-16页 |
| 文献综述 | 第16-31页 |
| 1 甾体化合物简介 | 第16页 |
| 2 甾体化合物的生物转化 | 第16-20页 |
| ·甾体生物转化类型 | 第17-18页 |
| ·甾体微生物转化常遇到的问题 | 第18-19页 |
| ·底物的溶解性 | 第18页 |
| ·细胞壁膜的阻碍作用 | 第18-19页 |
| ·甾体微生物转化一般方法 | 第19-20页 |
| 3 微生物对甾体11β-羟基化的研究概况 | 第20-24页 |
| ·氢化可的松的结构、性质及作用 | 第20-21页 |
| ·微生物甾体11β-羟化反应 | 第21-22页 |
| ·进行甾体11β-羟化反应的微生物 | 第22-24页 |
| 4 研究目的及内容 | 第24页 |
| 参考文献 | 第24-31页 |
| 第一章 菌株筛选 | 第31-40页 |
| 1 材料 | 第32-33页 |
| ·菌种 | 第32页 |
| ·培养基 | 第32页 |
| ·药品与试剂 | 第32-33页 |
| ·甾体 | 第32页 |
| ·主要试剂 | 第32页 |
| ·主要仪器 | 第32-33页 |
| 2 实验方法 | 第33-35页 |
| ·菌种活化 | 第33页 |
| ·高产菌株筛选 | 第33页 |
| ·甾体底物的制备 | 第33-34页 |
| ·A.coerulea AS 3.65的反应底物 | 第33页 |
| ·新月弯孢霉的反应底物 | 第33-34页 |
| ·转化过程中的分析检测 | 第34-35页 |
| ·薄层层析法(TLC) | 第34页 |
| ·半定量分析方法 | 第34-35页 |
| 3 结果与讨论 | 第35-37页 |
| ·菌株的分离活化 | 第35页 |
| ·TLC分析 | 第35-36页 |
| ·高活性菌株筛选 | 第36-37页 |
| 4 小结 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-40页 |
| 第二章 双菌多轮序列协同转化甾体RSA制氢化可的松 | 第40-50页 |
| 1 材料与方法 | 第41-42页 |
| ·菌种 | 第41页 |
| ·培养基 | 第41页 |
| ·仪器及试剂 | 第41页 |
| ·实验方法 | 第41-42页 |
| ·菌丝体的制备 | 第41-42页 |
| ·转化底物的制备 | 第42页 |
| ·生物转化-摇床实验 | 第42页 |
| ·分析方法 | 第42页 |
| 2 结果与讨论 | 第42-47页 |
| ·协同转化工艺 | 第42-45页 |
| ·协同转化组合的选择 | 第42-43页 |
| ·Ⅱ级接种量和菌丝体2投加时间对转化的影响 | 第43-44页 |
| ·菌丝体对甾体的吸附考察 | 第44页 |
| ·单菌转化与双菌协同转化的比较 | 第44-45页 |
| ·协同生物催化剂多次重复使用的性能考察 | 第45-47页 |
| ·首轮转化投料浓度对转化率的影响 | 第45-46页 |
| ·协同菌丝体转化多轮批次试验 | 第46-47页 |
| 3 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-50页 |
| 第三章 生物转化RSA制氢化可的松:改进底物添加体系 | 第50-60页 |
| 1 材料与方法 | 第51-52页 |
| ·菌种 | 第51页 |
| ·试剂及药品 | 第51页 |
| ·培养基 | 第51页 |
| ·方法 | 第51-52页 |
| ·生物催化剂的制备 | 第51页 |
| ·有机溶剂的选择 | 第51页 |
| ·放大制备实验 | 第51-52页 |
| ·分析方法 | 第52页 |
| 2 结果与讨论 | 第52-57页 |
| ·不同有机溶剂对生物转化的影响 | 第52-53页 |
| ·转化体系的再优化选择 | 第53-55页 |
| ·底物前处理方式对协同转化的影响 | 第53-54页 |
| ·Tween80/有机溶剂/RSA(v/v/w,mL/mL/g)比例对转化的影响 | 第54-55页 |
| ·底物添加体系对RSA负荷量的考察 | 第55页 |
| ·游离协同催化体系在Tween80/丙三醇转化介质中多次利用考察 | 第55-56页 |
| ·协同菌丝体在Tween80/丙三醇转化介质中的放大制备试验 | 第56-57页 |
| 3 小结 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-60页 |
| 第四章 改进底物体系应用于新月弯孢霉转化RSA制HC | 第60-69页 |
| 1 材料与方法 | 第60-62页 |
| ·微生物 | 第60页 |
| ·试剂及药品 | 第60-61页 |
| ·培养基 | 第61页 |
| ·方法 | 第61-62页 |
| ·甾体底物的制备 | 第61页 |
| ·菌丝体的制备及生物转化 | 第61页 |
| ·产物的提取分离及精制 | 第61-62页 |
| ·分析方法 | 第62页 |
| 2 结果与讨论 | 第62-66页 |
| ·不同投料方式对转化的影响 | 第62-63页 |
| ·吐温8/0丙三醇/RAS(vv//)w浓度比例对转化的影响 | 第63页 |
| ·菌体量对生物转化的影响 | 第63-64页 |
| ·底物浓度对转化的影响 | 第64-65页 |
| ·最佳转化时间的确立 | 第65页 |
| ·转化轮次的考察 | 第65-66页 |
| ·C.lunataAS 3.4381转化RSA的制备实验 | 第66页 |
| 3 小结 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-69页 |
| 全文总结 | 第69-71页 |
| 展望 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 在读期间科研成果 | 第73页 |
