中文摘要 | 第1-7页 |
英文摘要 | 第7-17页 |
前言 | 第17-19页 |
第一章 骨保护素(OPG)在人体腹主动脉瘤组织中的表达 | 第19-38页 |
前言 | 第19页 |
1. 材料与方法 | 第19-29页 |
·研究对象 | 第19-20页 |
·试剂和仪器 | 第20-21页 |
·实验方法和步骤 | 第21-29页 |
·统计方法 | 第29页 |
2. 结果 | 第29-35页 |
·HE染色结果 | 第29-30页 |
·免疫组化结果 | 第30-31页 |
·OPG,MMP-9 Western blot结果 | 第31-33页 |
·OPG,MMP-9 mRNA检测结果 | 第33-35页 |
3. 讨论 | 第35-37页 |
4. 结论 | 第37-38页 |
第二章 同种异体腹主动脉瘤兔模型的建立及OPG的表达 | 第38-55页 |
前言 | 第38-39页 |
1. 材料与方法 | 第39-44页 |
·实验动物 | 第39页 |
·实验分组 | 第39页 |
·试剂及仪器 | 第39-40页 |
·实验方法与步骤 | 第40-43页 |
·统计方法 | 第43-44页 |
2. 结果 | 第44-52页 |
·移植物大体形态变化及腹主动脉成瘤情况 | 第44页 |
·瘤体HE和Masson特殊染色组织学改变 | 第44-46页 |
·腹主动脉瘤形态定量特征 | 第46页 |
·免疫组化结果 | 第46-47页 |
·OPG,MMP-9 Western blot结果 | 第47-49页 |
·OPG,MMP-9 RT-PCR结果 | 第49-50页 |
·TUNEL结果 | 第50-52页 |
3. 讨论 | 第52-54页 |
4. 结论 | 第54-55页 |
第三章 OPG基因表达与血管平滑肌细胞凋亡的关系 | 第55-88页 |
前言 | 第55-56页 |
第一部分 OPG过表达腺病毒制备 | 第56-67页 |
1. 材料与方法 | 第56-62页 |
·材料 | 第56页 |
·试剂和仪器 | 第56-57页 |
·实验方法与步骤 | 第57-62页 |
2. 结果 | 第62-67页 |
·PCR扩增OPG基因 | 第62页 |
·pYr-adshuttle-1-OPG酶切鉴定 | 第62-63页 |
·pYr-adshuttle-1-OPG测序鉴定 | 第63-64页 |
·pAd-OPG酶切鉴定 | 第64页 |
·pAd-OPG测序鉴定 | 第64-66页 |
·rAd-OPG的PCR鉴定 | 第66-67页 |
第二部分 OPG RNA干扰腺病毒制备 | 第67-75页 |
1. 材料与方法 | 第67-72页 |
·材料 | 第67-68页 |
·试剂和仪器 | 第68页 |
·实验方法与步骤 | 第68-72页 |
2. 结果 | 第72-75页 |
·pYr-2.1-hU6-OPG-shRNA酶切鉴定 | 第72-73页 |
·pYr-2.1-hU6-OPG-shRNA测序鉴定 | 第73页 |
·pAd-OPG-shRNA酶切鉴定 | 第73-74页 |
·rAd-OPG-shRNA的PCR鉴定 | 第74-75页 |
第三部分 OPG与人主动脉血管平滑肌细胞凋亡的关系研究 | 第75-88页 |
1. 材料与方法 | 第75-79页 |
·材料 | 第75页 |
·试剂和仪器 | 第75页 |
·实验方法与步骤 | 第75-78页 |
·统计方法 | 第78-79页 |
2. 结果 | 第79-84页 |
·人VSMC的培养和鉴定 | 第79页 |
·腺病毒感染HVSMC MOI条件摸索 | 第79-80页 |
·RT-PCR结果 | 第80-81页 |
·Western-blot结果 | 第81-82页 |
·Hoechst 33258染色 | 第82-83页 |
·流式细胞检测结果 | 第83-84页 |
3. 讨论 | 第84-87页 |
4. 结论 | 第87-88页 |
参考文献 | 第88-93页 |
综述一 | 第93-117页 |
综述二 | 第117-142页 |
致谢 | 第142-143页 |
攻读学位期间主要研究成果 | 第143-144页 |