| 缩略语表 | 第7-9页 |
| 中文摘要 | 第9-11页 |
| ABSTRACT | 第11-13页 |
| 第一章 综述 | 第14-23页 |
| 1 纳米金属框架作为药物载体的研究现状 | 第14-16页 |
| 1.1 NMOFs的制备研究 | 第14-15页 |
| 1.2 NMOFs的载药研究 | 第15页 |
| 1.3 NMOFs的载药机理研究 | 第15-16页 |
| 1.4 NMOFs的生物相容性研究 | 第16页 |
| 2 主动靶向纳米传递系统 | 第16-18页 |
| 2.1 以受体介导的主动靶向纳米传递系统研究 | 第17-18页 |
| 2.2 以配体介导的主动靶向纳米传递系统研究 | 第18页 |
| 3 RGD肽作为药物靶向配体的优势 | 第18-20页 |
| 3.1 RGD肽与整合素家族 | 第18-19页 |
| 3.2 RGD肽与肿瘤治疗 | 第19-20页 |
| 4 模型药物的选择 | 第20-22页 |
| 4.1 结构和理化性质 | 第20-21页 |
| 4.2 药理作用 | 第21页 |
| 4.3 临床应用 | 第21-22页 |
| 5 立题依据 | 第22页 |
| 6 创新点 | 第22-23页 |
| 第二章 IRMOF-3的制备工艺验证及表征 | 第23-30页 |
| 1 纳米有机金属框架IRMOF-3的制备 | 第23页 |
| 1.1 试剂 | 第23页 |
| 1.2 仪器 | 第23页 |
| 1.3 制备方法 | 第23页 |
| 2 纳米有机金属框架IRMOF-3的表征 | 第23-24页 |
| 2.1 红外光谱的检测 | 第23-24页 |
| 2.2 粉末X射线(PXRD) | 第24页 |
| 2.3 扫描电镜观察IRMOF-3的形态 | 第24页 |
| 2.4 氮气吸附试验 | 第24页 |
| 3 纳米有机金属框架IRMOF-3的溶血性实验 | 第24-25页 |
| 3.1 2%红细胞悬液的制备 | 第24页 |
| 3.2 试验方法 | 第24-25页 |
| 3.3 判断标准 | 第25页 |
| 4 结果与讨论 | 第25-28页 |
| 4.1 IRMOF-3IR的表征 | 第25-26页 |
| 4.2 粉末X射线的检测 | 第26页 |
| 4.3 扫描电镜观察IRMOF-3的载体形态 | 第26-27页 |
| 4.4 氮气吸附试验 | 第27-28页 |
| 4.5 溶血性试验 | 第28页 |
| 5 小结 | 第28-30页 |
| 第三章 RGD与IRMOF-3连接的制备、表征及RIR靶向初步检测 | 第30-41页 |
| 1 材料与动物 | 第30页 |
| 2 RGD与IRMOF-3连接制备工艺 | 第30页 |
| 3 RIR的表征 | 第30-31页 |
| 3.1 红外光谱的检测 | 第30页 |
| 3.2 扫描电镜观察载体的形态 | 第30页 |
| 3.3 质谱(MS)检测 | 第30-31页 |
| 3.4 元素分析测定 | 第31页 |
| 4 FIVE1初步探测RIR的肺靶向性 | 第31-33页 |
| 4.1 RIR纳米粒正常鼠靶向性研究 | 第31-32页 |
| 4.2 RIR纳米粒肿瘤鼠靶向性研究 | 第32-33页 |
| 5 结果与讨论 | 第33-39页 |
| 5.1 IR谱谱 | 第33-34页 |
| 5.2 MS图谱 | 第34-35页 |
| 5.3 SEMF图谱 | 第35页 |
| 5.4 元素分析 | 第35页 |
| 5.5 靶向性探测结果 | 第35-37页 |
| 5.6 FITC-RIR纳米粒在不同时间点不同组织的观测结果 | 第37-39页 |
| 6 小结 | 第39-41页 |
| 第四章 RIR纳米粒装载CTD的制备及表征 | 第41-62页 |
| 1 材料 | 第41页 |
| 1.1 药品与试剂 | 第41页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第41页 |
| 2 方法与实验内容 | 第41-45页 |
| 2.1 CTD体外分析方法的建立 | 第41-44页 |
| 2.2 CTD-RIR的评价 | 第44页 |
| 2.3 制备方法的考察 | 第44-45页 |
| 2.4 CTD-RIR表征 | 第45页 |
| 3 结果和讨论 | 第45-61页 |
| 3.1 CTD方法学考察 | 第45-52页 |
| 3.2 响应面法优化载药条件 | 第52-59页 |
| 3.3 CTD-RIR的表征。 | 第59-61页 |
| 4 小结 | 第61-62页 |
| 第五章 CTD-RIR体外释放动力学及冻干工艺研究 | 第62-73页 |
| 1 CTD-RIR体外释放研究 | 第62-64页 |
| 1.1 主要仪器设备 | 第62页 |
| 1.2 方法与实验内容 | 第62-64页 |
| 2 载药有机金属框架冻干工艺的研究 | 第64-66页 |
| 2.1 仪器与试剂 | 第64页 |
| 2.2 方法 | 第64-66页 |
| 3 结果和讨论 | 第66-71页 |
| 3.1 CTD标准曲线的绘制 | 第66页 |
| 3.2. 释放介质的选择 | 第66页 |
| 3.3 CTD在释放介质中稳定性考察 | 第66页 |
| 3.4 正向动态透析法(dialysis method,DM) | 第66-67页 |
| 3.5 反向动态透析法(reverse dialysis method,RDM) | 第67-68页 |
| 3.6 释药动力学探讨 | 第68-69页 |
| 3.7 冻干粉的制备工艺 | 第69-70页 |
| 3.8 冻干处方优选 | 第70页 |
| 3.9 扫描电镜对冻干前后形态的观察 | 第70-71页 |
| 4 小结 | 第71-73页 |
| 第六章 CTD-RIR纳米粒大鼠体内药动学研究 | 第73-87页 |
| 1 生物样品中CTD-RIR分析方法的建立 | 第73-77页 |
| 1.1 材料与动物 | 第73-74页 |
| 1.2 方法与结果 | 第74-77页 |
| 2 大鼠体内药动学研究 | 第77-85页 |
| 2.1 材料与动物 | 第77-78页 |
| 2.2 实验方法 | 第78页 |
| 2.3 实验结果 | 第78-85页 |
| 3 小结 | 第85-87页 |
| 第七章 RIR纳米粒靶向性研究 | 第87-103页 |
| 1 裸小鼠肺癌模型的建立 | 第87-89页 |
| 1.1 仪器与试剂 | 第87页 |
| 1.2 动物与材料 | 第87页 |
| 1.3 方法 | 第87-89页 |
| 2 通过活体成像技术对肺癌小鼠进行靶向性研究 | 第89-90页 |
| 2.1 仪器与试剂 | 第89页 |
| 2.2 试验方法 | 第89页 |
| 2.3 结果 | 第89-90页 |
| 3 通过组织分布试验对肺癌小鼠进行靶向性研究 | 第90-101页 |
| 3.1 生物样品中斑蝥素分析方法的建立 | 第90页 |
| 3.2 方法与结果 | 第90-96页 |
| 3.3 肺癌小鼠组织分布试验 | 第96-101页 |
| 4 小结 | 第101-103页 |
| 第八章 全文总结 | 第103-104页 |
| 参考文献 | 第104-113页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文 | 第113-115页 |
| 个人简历 | 第115页 |
