| 摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-27页 |
| 1.1 高等植物的启动子概述 | 第14-20页 |
| 1.1.1 启动子的概念 | 第14页 |
| 1.1.2 高等植物启动子的结构特征 | 第14-16页 |
| 1.1.3 植物启动子的类型 | 第16-20页 |
| 1.2 植物启动子克隆方法 | 第20-22页 |
| 1.2.1 利用基因组文库筛选启动子 | 第20页 |
| 1.2.2 利用启动子探针质粒载体筛选启动子 | 第20-21页 |
| 1.2.3 利用启动子捕获方法分离鉴别启动子 | 第21页 |
| 1.2.4 利用PCR技术克隆启动子 | 第21-22页 |
| 1.3 启动子功能分析方法 | 第22-24页 |
| 1.3.1 生物信息学分析法 | 第22页 |
| 1.3.2 点突变分析 | 第22-23页 |
| 1.3.3 瞬时表达分析 | 第23页 |
| 1.3.4 稳定表达分析 | 第23页 |
| 1.3.5 其他分析方法 | 第23-24页 |
| 1.4 翻译控制肿瘤蛋白(TCTP)启动子的研究进展 | 第24-25页 |
| 1.5 本研究的目的与意义 | 第25-27页 |
| 第二章 黄瓜CsTCTPs启动子的克隆及生物信息学分析 | 第27-37页 |
| 2.1 试验材料与方法 | 第27-29页 |
| 2.1.1 试验仪器 | 第27页 |
| 2.1.2 试验试剂 | 第27页 |
| 2.1.3 试验材料 | 第27-28页 |
| 2.1.4 试验方法 | 第28-29页 |
| 2.2 结果与分析 | 第29-35页 |
| 2.2.1 黄瓜叶片基因组DNA的提取 | 第29-30页 |
| 2.2.2 黄瓜CsTCTP1和CsTCTP2启动子全长的克隆及序列比对 | 第30-31页 |
| 2.2.3 黄瓜CsTCTPs启动子的生物信息学分析 | 第31-35页 |
| 2.3 讨论与结论 | 第35-37页 |
| 第三章 黄瓜CsTCTPs基因启动子缺失表达载体的构建 | 第37-47页 |
| 3.1 试验材料与方法 | 第37-40页 |
| 3.1.1 仪器和试剂 | 第37页 |
| 3.1.2 菌株与载体 | 第37页 |
| 3.1.3 试剂配制 | 第37-38页 |
| 3.1.4 引物设计 | 第38页 |
| 3.1.5 试验方法 | 第38-40页 |
| 3.2 结果与分析 | 第40-46页 |
| 3.2.1 CsTCTPs启动子各缺失片段的克隆 | 第40-41页 |
| 3.2.2 CsTCTPs启动子各缺失片段的菌落PCR及测序比对 | 第41-44页 |
| 3.2.3 pMD18-T-pCsTCTPs与pCAMBIA1301的双酶切 | 第44-45页 |
| 3.2.4 终载体的构建及鉴定 | 第45-46页 |
| 3.3 讨论与结论 | 第46-47页 |
| 第四章 利用瞬时表达分析鉴定CsTCTPs启动子的活性及功能 | 第47-58页 |
| 4.1 试验材料与方法 | 第47-52页 |
| 4.1.1 试验仪器和试剂 | 第47页 |
| 4.1.2 菌株与载体 | 第47页 |
| 4.1.3 试验材料 | 第47-48页 |
| 4.1.4 试剂配制 | 第48-49页 |
| 4.1.5 试验方法 | 第49-52页 |
| 4.2 结果与分析 | 第52-56页 |
| 4.2.1 重组质粒转化农杆菌的鉴定 | 第52-53页 |
| 4.2.2 农杆菌介导的GUS基因的瞬时表达分析 | 第53-54页 |
| 4.2.3 外源激素对CsTCTPs启动子活性的影响 | 第54-56页 |
| 4.3 讨论与结论 | 第56-58页 |
| 参考文献 | 第58-67页 |
| 附录 | 第67-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 攻读硕士学位期间发表文章 | 第70-71页 |
