| 摘要 | 第8-9页 |
| 英文摘要 | 第9-10页 |
| 1 前言 | 第11-22页 |
| 1.1 细胞剔除概述 | 第11页 |
| 1.2 白喉毒素及其受体 | 第11-14页 |
| 1.2.1 白喉毒素概述 | 第11-12页 |
| 1.2.2 白喉毒素受体 | 第12-14页 |
| 1.3 Cre-loxp系统 | 第14-16页 |
| 1.3.1 Cre重组酶 | 第15页 |
| 1.3.2 loxp位点 | 第15-16页 |
| 1.3.3 Cre-loxp系统的改良 | 第16页 |
| 1.4 子宫特异性Cre工具鼠 | 第16-19页 |
| 1.4.1 PRCre/+工具鼠 | 第16-18页 |
| 1.4.2 Amhr2Cre/+工具鼠 | 第18页 |
| 1.4.3 LtfCre/+工具鼠 | 第18-19页 |
| 1.5 pCAG-STOP-DTR-2A-EGFP小鼠 | 第19-21页 |
| 1.5.1 pCAG-STOP-DTR-2A-EGFP小鼠 | 第19-20页 |
| 1.5.2 pCAG-STOP-DTR-2A-EGFP小鼠优点 | 第20-21页 |
| 1.6 研究的目的和意义 | 第21-22页 |
| 2 材料与方法 | 第22-31页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-23页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第22页 |
| 2.1.2 主要仪器和设备 | 第22页 |
| 2.1.3 主要试剂和试剂盒 | 第22-23页 |
| 2.1.4 常用试剂与配制 | 第23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-31页 |
| 2.2.1 转基因鼠的制作 | 第23-24页 |
| 2.2.2 注射DT方法及剂量 | 第24页 |
| 2.2.3 取材 | 第24页 |
| 2.2.4 免疫组化 | 第24-26页 |
| 2.2.5 Westernblotting | 第26-27页 |
| 2.2.6 HE染色 | 第27-28页 |
| 2.2.7 DNA鉴定 | 第28-31页 |
| 3 结果与分析 | 第31-40页 |
| 3.1 基因鉴定 | 第31页 |
| 3.2 DT的剂量摸索 | 第31-32页 |
| 3.3 GFP在PR-DTR、Amhr2-DTR、ltf-DTR小鼠子宫中的表达 | 第32-35页 |
| 3.3.1 GFP在PR-DTR小鼠子宫中的表达 | 第32-33页 |
| 3.3.2 GFP在Amhr2-DTR小鼠子宫中的表达 | 第33页 |
| 3.3.3 GFP在Ltf-DTR小鼠子宫中的表达 | 第33-34页 |
| 3.3.4 GFP在PR-DTR、Amhr2-DTR、Ltf-DTR小鼠子宫中Westernblotting结果 | 第34-35页 |
| 3.4 注射DT之后不同小鼠子宫形态图 | 第35-36页 |
| 3.5 注射DT之后不同小鼠子宫HE染色结果 | 第36-37页 |
| 3.6 注射DT之后FOXA2在不同小鼠子宫的表达 | 第37-38页 |
| 3.7 注射DT12小时后Ltf-DTR小鼠子宫形态 | 第38-40页 |
| 4 讨论 | 第40-42页 |
| 4.1 DTR能够在小鼠子宫不同区域表达 | 第40页 |
| 4.2 注射DT后不同小鼠子宫形态变化 | 第40-41页 |
| 4.3 注射DT后FOXA2在不同小鼠子宫中的表达 | 第41页 |
| 4.4 Ltf-DTR小鼠剔除子宫上皮细胞及应用 | 第41-42页 |
| 5 结论 | 第42-43页 |
| 致谢 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-51页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第51页 |
