| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 英文缩略词一览表 | 第11-14页 |
| 第1章 绪论 | 第14-30页 |
| 1.1 肿瘤细胞的特征 | 第14-15页 |
| 1.2 肝癌的研究现状 | 第15-17页 |
| 1.2.1 肝癌的发生及发病率 | 第15-16页 |
| 1.2.2 肝癌诊断、治疗现状 | 第16-17页 |
| 1.3 噬菌体展示技术 | 第17-24页 |
| 1.3.1 噬菌体展示技术的原理 | 第17-18页 |
| 1.3.2 噬菌体展示系统 | 第18-19页 |
| 1.3.3 噬菌体展示技术筛选多肽的筛选方法 | 第19-21页 |
| 1.3.4 噬菌体展示技术在肿瘤研究中的应用 | 第21-24页 |
| 1.4 多肽在癌症纳米医学中的应用 | 第24-30页 |
| 1.4.1 多肽作为药物载体 | 第24-25页 |
| 1.4.2 多肽作为酶反应底物 | 第25-26页 |
| 1.4.3 多肽作为靶向配体 | 第26-30页 |
| 第2章 本课题的研究意义与内容、创新之处及技术路线 | 第30-32页 |
| 第3章 肝癌特异性肽序噬菌体克隆的特异性及敏感性研究 | 第32-46页 |
| 3.1 实验材料 | 第32-35页 |
| 3.1.1 细胞株、噬菌体克隆及宿主菌 | 第32页 |
| 3.1.2 主要仪器及试剂配制 | 第32-35页 |
| 3.2 实验方法 | 第35-39页 |
| 3.2.1 宿主菌E.coli ER2738的活化 | 第35页 |
| 3.2.2 噬菌体扩增 | 第35-36页 |
| 3.2.3 噬菌体滴定 | 第36-37页 |
| 3.2.4 细胞培养 | 第37-38页 |
| 3.2.5 细胞免疫荧光 | 第38-39页 |
| 3.2.6 细胞免疫化学 | 第39页 |
| 3.3 实验结果 | 第39-44页 |
| 3.3.1 噬菌体克隆的扩增滴定结果 | 第39-40页 |
| 3.3.2 细胞免疫荧光鉴定 | 第40-43页 |
| 3.3.3 细胞免疫化学鉴定 | 第43-44页 |
| 3.4 讨论 | 第44-46页 |
| 第4章 肝癌特异性探针的特异性/敏感性研究 | 第46-56页 |
| 4.1 实验材料 | 第46-47页 |
| 4.1.1 细胞系及多肽探针 | 第46页 |
| 4.1.2 主要仪器及试剂配制 | 第46-47页 |
| 4.2 实验方法 | 第47-50页 |
| 4.2.1 多肽探针的合成 | 第47页 |
| 4.2.2 多肽对噬菌体的竞争抑制 | 第47-48页 |
| 4.2.3 多肽探针与HepG2细胞结合特异性研究 | 第48页 |
| 4.2.4 多肽分子探针Hepa的剂量效应 | 第48-49页 |
| 4.2.5 多肽分子探针与多种肿瘤细胞的结合特异性研究 | 第49页 |
| 4.2.6 流式细胞仪检测多肽探针的结合特异性 | 第49-50页 |
| 4.3 实验结果及讨论 | 第50-56页 |
| 4.3.1 合成多肽探针 | 第50页 |
| 4.3.2 多肽对噬菌体的竞争抑制 | 第50-51页 |
| 4.3.3 多肽探针与HepG2细胞结合特异性研究 | 第51-52页 |
| 4.3.4 Hepa probe的剂量效应 | 第52-53页 |
| 4.3.5 Hepa probe与多种肿瘤细胞的结合特异性 | 第53-54页 |
| 4.3.6 流式细胞仪检测Hepa probe的结合特异性 | 第54-56页 |
| 第5章 多肽探针与组织的特异性及敏感性研究 | 第56-62页 |
| 5.1 实验材料 | 第56-58页 |
| 5.1.1 组织芯片及多肽探针 | 第56-58页 |
| 5.1.2 主要仪器及试剂配制 | 第58页 |
| 5.2 实验方法 | 第58-59页 |
| 5.2.1 组织芯片分析 | 第58-59页 |
| 5.3 实验结果 | 第59-61页 |
| 5.3.1 多肽分子探针结合肝癌组织芯片特异性结果 | 第59-61页 |
| 5.4 讨论 | 第61-62页 |
| 第6章 肝癌多肽分子探针的定位分析及功能研究 | 第62-68页 |
| 6.1 实验材料 | 第62-63页 |
| 6.1.1 细胞系及多肽探针 | 第62页 |
| 6.1.2 主要仪器及试剂配制 | 第62-63页 |
| 6.2 实验方法 | 第63-64页 |
| 6.2.1 多肽分子探针Hepa probe定位分析 | 第63页 |
| 6.2.2 多肽分子探针Hepa probe对HepG2细胞增殖的影响 | 第63-64页 |
| 6.3 实验结果 | 第64-65页 |
| 6.3.1 Hepa probe的定位分析 | 第64-65页 |
| 6.3.2 MTT法检测Hepa probe对HepG2细胞增殖的影响 | 第65页 |
| 6.4 讨论 | 第65-68页 |
| 第7章 多肽分子探针的结构及其生物信息学分析 | 第68-74页 |
| 7.1 实验材料 | 第68页 |
| 7.1.1 多肽探针 | 第68页 |
| 7.1.2 主要仪器及试剂 | 第68页 |
| 7.2 实验方法 | 第68-69页 |
| 7.2.1 圆二色谱法分析 | 第68-69页 |
| 7.2.2 多肽探针序列分析 | 第69页 |
| 7.3 实验结果 | 第69-72页 |
| 7.3.1 多肽探针Hepa的α-螺旋组成 | 第69-71页 |
| 7.3.2 序列分析结果 | 第71-72页 |
| 7.4 实验讨论 | 第72-74页 |
| 第8章 多肽分子探针靶分子的预测分析 | 第74-78页 |
| 8.1 以数据库预测HCC特异性靶分子 | 第74页 |
| 8.2 CK-2分子结构和激酶活性的初步分析 | 第74-75页 |
| 8.3 CK-2的有关研究简介 | 第75页 |
| 8.4 Hepa probe与CK-2的分子模拟对接 | 第75-77页 |
| 8.5 关于CK-2分子作为靶分子进一步分析的后续工作 | 第77-78页 |
| 总结 | 第78-80页 |
| 参考文献 | 第80-94页 |
| 致谢 | 第94-96页 |
| 攻读硕士学位期间的科研成果 | 第96页 |
