| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4-5页 |
| 第一章 绪论 | 第10-23页 |
| 1.1 丁醇概述 | 第10-12页 |
| 1.1.1 丁醇基本性质与用途 | 第10页 |
| 1.1.2 正丁醇的生产方法 | 第10-11页 |
| 1.1.3 丁醇的市场需求及现状 | 第11-12页 |
| 1.2 发酵法生产丁醇 | 第12-15页 |
| 1.2.1 丙酮丁醇发酵发展史 | 第12-13页 |
| 1.2.2 丙酮丁醇发酵及其代谢原理 | 第13-15页 |
| 1.3 利用木质纤维素发酵生产丁醇 | 第15-17页 |
| 1.3.1 木质纤维素现状 | 第15-16页 |
| 1.3.2 木质纤维素的预处理 | 第16-17页 |
| 1.4 发酵法产丁醇遇到的问题与改进 | 第17-20页 |
| 1.4.1 固定化细胞发酵 | 第17-18页 |
| 1.4.2 分离耦合方法的应用 | 第18-19页 |
| 1.4.3 抑制物的产生及去除 | 第19-20页 |
| 1.5 分子印迹技术 | 第20-21页 |
| 1.5.1 分子印迹技术概述 | 第20页 |
| 1.5.2 分子印迹的基本过程与方法 | 第20-21页 |
| 1.5.3 分子印迹技术的分类 | 第21页 |
| 1.6 本文研究工作 | 第21-23页 |
| 1.6.1 研究背景及意义 | 第21-22页 |
| 1.6.2 研究内容及创新点 | 第22-23页 |
| 第二章 丙酮丁醇梭菌发酵培养条件及分析方法的确定 | 第23-38页 |
| 2.1 引言 | 第23页 |
| 2.2 试剂与仪器 | 第23-25页 |
| 2.2.1 菌种 | 第23页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第23-24页 |
| 2.2.3 培养基 | 第24-25页 |
| 2.2.4 主要仪器设备 | 第25页 |
| 2.3 实验方法 | 第25-28页 |
| 2.3.1 菌种的培养 | 第25-26页 |
| 2.3.2 气相色谱法检测ABE方法的建立 | 第26-27页 |
| 2.3.3 DNS法测定葡萄糖浓度 | 第27-28页 |
| 2.3.4 OD值测定 | 第28页 |
| 2.3.5 热激对发酵的影响 | 第28页 |
| 2.3.6 葡萄糖浓度对发酵的影响 | 第28页 |
| 2.3.7 培养液初始pH值对发酵的影响 | 第28页 |
| 2.4 结果与分析 | 第28-37页 |
| 2.4.1 内标法测定发酵产物的确定 | 第28-32页 |
| 2.4.2 葡萄糖标准曲线 | 第32页 |
| 2.4.3 热激对丙酮丁醇梭菌的影响 | 第32-33页 |
| 2.4.4 葡萄糖浓度对发酵的影响 | 第33-34页 |
| 2.4.5 培养液初始pH值对发酵影响 | 第34-35页 |
| 2.4.6 丙酮丁醇梭菌发酵结果 | 第35-37页 |
| 2.5 本章小结 | 第37-38页 |
| 第三章 海藻钙包埋丙丁梭菌耦合液液萃取发酵的应用研究 | 第38-52页 |
| 3.1 引言 | 第38页 |
| 3.2 试剂与仪器 | 第38-40页 |
| 3.2.1 菌种 | 第38页 |
| 3.2.2 主要试剂 | 第38-39页 |
| 3.2.3 菌种与培养基 | 第39页 |
| 3.2.4 主要仪器设备 | 第39-40页 |
| 3.3 实验方法 | 第40-42页 |
| 3.3.1 菌种的培养 | 第40页 |
| 3.3.2 固定化细胞吸附剂的制备 | 第40-41页 |
| 3.3.3 吸附剂性能测试 | 第41页 |
| 3.3.4 萃取剂的选择 | 第41-42页 |
| 3.3.5 萃取时间与浓度的关系 | 第42页 |
| 3.3.6 原位萃取发酵 | 第42页 |
| 3.3.7 分批补料下的吸附剂耦合萃取发酵 | 第42页 |
| 3.4 结果与分析 | 第42-51页 |
| 3.4.1 吸附剂制备工艺的确定 | 第42-44页 |
| 3.4.2 最佳萃取剂的确定 | 第44-45页 |
| 3.4.3 萃取平衡时间 | 第45页 |
| 3.4.4 原位萃取发酵 | 第45-47页 |
| 3.4.5 分批补料下的原位萃取发酵 | 第47-48页 |
| 3.4.6 海藻钙吸附剂的红外分析 | 第48页 |
| 3.4.7 海藻钙吸附剂的形貌分析 | 第48-49页 |
| 3.4.8 海藻钙吸附剂的热重分析 | 第49-50页 |
| 3.4.9 海藻钙吸附剂比表面分析 | 第50-51页 |
| 3.5 本章小结 | 第51-52页 |
| 第四章 葡萄糖分子印迹水凝胶在发酵水解液中的应用研究 | 第52-63页 |
| 4.1 引言 | 第52页 |
| 4.2 试剂与仪器 | 第52-53页 |
| 4.2.1 菌种 | 第52页 |
| 4.2.2 主要试剂 | 第52-53页 |
| 4.2.4 主要仪器设备 | 第53页 |
| 4.3 实验方法 | 第53-55页 |
| 4.3.1 甘蔗渣的水解 | 第53-54页 |
| 4.3.2 葡萄糖分子印迹凝胶的制备 | 第54-55页 |
| 4.3.3 印迹水凝胶富集糖的发酵 | 第55页 |
| 4.4 结果与分析 | 第55-62页 |
| 4.4.1 液固比对水解的影响 | 第55-56页 |
| 4.4.2 水解稀释量对水解的影响 | 第56页 |
| 4.4.3 水解温度对水解的影响 | 第56-57页 |
| 4.4.4 印迹水凝胶洗脱方式的选择 | 第57-58页 |
| 4.4.5 功能单体与模板分子添加比例对凝胶吸附性能的影响 | 第58-59页 |
| 4.4.6 交联剂用量对凝胶吸附性能的影响 | 第59页 |
| 4.4.7 凝胶吸附平衡时间 | 第59-60页 |
| 4.4.8 印迹聚合物再生性能的研究 | 第60-61页 |
| 4.4.9 水凝胶富集糖的丁醇发酵 | 第61-62页 |
| 4.5 本章小结 | 第62-63页 |
| 结论与展望 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 个人简介 | 第73页 |
