用于3D生物打印的双网络胶体凝胶的开发
摘要 | 第3-4页 |
Abstract | 第4页 |
引言 | 第8-9页 |
1 文献综述 | 第9-28页 |
1.1 三维生物打印技术 | 第9-10页 |
1.2 物理水凝胶的分类 | 第10-20页 |
1.2.1 超分子水凝胶 | 第10-13页 |
1.2.1.1 离子与配位相互作用 | 第11-12页 |
1.2.1.2 氢键相互作用 | 第12页 |
1.2.1.3 主客体和芳香性供体受体相互作用 | 第12-13页 |
1.2.2 高分子水凝胶 | 第13-17页 |
1.2.2.1 天然多糖高分子 | 第13-15页 |
1.2.2.2 蛋白质 | 第15-16页 |
1.2.2.3 合成高分子 | 第16-17页 |
1.2.3 胶体凝胶 | 第17-20页 |
1.2.3.1 明胶纳米颗粒 | 第17-18页 |
1.2.3.2 二氧化硅纳米粒子和锂皂石基水凝胶 | 第18-19页 |
1.2.3.3 碳纳米管和石墨烯纳米片 | 第19页 |
1.2.3.4 金纳米颗粒 | 第19-20页 |
1.3 3D打印生物墨水的流变特征 | 第20-24页 |
1.4 双网络水凝胶研究现状 | 第24-25页 |
1.5 本研究的目的、意义及内容 | 第25-28页 |
1.5.1 研究的目的和意义 | 第25-26页 |
1.5.2 研究的内容 | 第26-27页 |
1.5.3 创新点 | 第27-28页 |
2 双网络胶体凝胶的制备与表征 | 第28-42页 |
2.1 前言 | 第28页 |
2.2 实验部分 | 第28-33页 |
2.2.1 材料与仪器 | 第28-29页 |
2.2.2 明胶纳米微球的制备 | 第29页 |
2.2.3 荧光明胶纳米微球的制备 | 第29-30页 |
2.2.5 纳米微球尺寸和表面电荷的表征 | 第30页 |
2.2.6 聚乙二醇二丙烯酸酯的制备 | 第30页 |
2.2.7 核磁共振波谱测试 | 第30页 |
2.2.8 胶体凝胶的体积分数的计算 | 第30页 |
2.2.9 胶体凝胶微观结构观察 | 第30-31页 |
2.2.10 凝胶结构分析 | 第31页 |
2.2.11 胶体凝胶流变测试 | 第31页 |
2.2.12 傅里叶变换红外光谱测试 | 第31-32页 |
2.2.13 胶体凝胶网络断面扫描电镜观察 | 第32页 |
2.2.14 流变测试 | 第32页 |
2.2.15 压缩测试 | 第32页 |
2.2.16 拉伸测试 | 第32-33页 |
2.3 实验结果与讨论 | 第33-41页 |
2.3.1 明胶纳米颗粒的制备 | 第33页 |
2.3.2 聚乙二醇二丙烯酸酯的制备 | 第33-34页 |
2.3.3 胶体凝胶微观结构 | 第34-37页 |
2.3.4 胶体凝胶力学流变数据 | 第37-38页 |
2.3.5 胶体凝胶力学强度 | 第38-41页 |
2.4 本章小结 | 第41-42页 |
3 3D生物打印胶体凝胶支架及其生物学评价 | 第42-52页 |
3.1 前言 | 第42页 |
3.2 实验部分 | 第42-46页 |
3.2.1 试剂与仪器 | 第42-43页 |
3.2.2 胶体凝胶的3D生物打印 | 第43页 |
3.2.3 打印支架溶胀率测试 | 第43-44页 |
3.2.4 细胞提取 | 第44页 |
3.2.5 细胞培养 | 第44页 |
3.2.6 三维打印胶体凝胶支架培养间充质干细胞 | 第44页 |
3.2.7 荧光活性染色 | 第44-45页 |
3.2.8 细胞增值检测 | 第45页 |
3.2.9 FTIR傅里叶变换光谱测试 | 第45页 |
3.2.10 3D打支架扫描电镜观察 | 第45页 |
3.2.11 植入胶体凝胶制备 | 第45页 |
3.2.12 SD大鼠皮下植入 | 第45-46页 |
3.2.13 石蜡切片 | 第46页 |
3.2.14 苏木精伊红染色 | 第46页 |
3.3 实验结果分析与讨论 | 第46-51页 |
3.3.1 胶体凝胶打印支架宏观性能和力学分析 | 第46-48页 |
3.3.2 胶体凝胶支架三维细胞培养 | 第48-49页 |
3.3.3 矿化分析 | 第49-50页 |
3.3.4 皮下植入降解性能 | 第50-51页 |
3.4 本章小结 | 第51-52页 |
结论 | 第52-53页 |
参考文献 | 第53-64页 |
攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第64-65页 |
致谢 | 第65-66页 |