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葛根素对H2O2诱导的线粒体损伤的保护作用

摘要第2-3页
Abstract第3-4页
引言第9-10页
1 文献综述第10-23页
    1.1 氧化应激与线粒体功能障碍第10-12页
        1.1.1 氧化应激诱导线粒体DNA发生突变第10页
        1.1.2 氧化应激影响线粒体呼吸链第10-11页
        1.1.3 氧化应激改变线粒体膜的通透性第11页
        1.1.4 氧化应激影响线粒体内钙离子的稳态第11-12页
        1.1.5 氧化应激影响线粒体动力学第12页
    1.2 线粒体功能障碍与神经退行性疾病第12-16页
        1.2.1 线粒体功能障碍与AD第13-14页
        1.2.2 线粒体功能障碍与PD第14-15页
        1.2.3 线粒体功能障碍与HD第15页
        1.2.4 线粒体功能障碍与ALS第15-16页
    1.3 雌激素与线粒体第16-20页
        1.3.1 雌激素受体第16-17页
        1.3.2 雌激素的作用机制第17-19页
        1.3.3 雌激素对线粒体功能的调节作用第19-20页
    1.4 葛根素的研究进展第20-22页
    1.5 本文的选题依据与研究内容第22-23页
2 H_2O_2对PC12细胞的损伤作用第23-33页
    2.1 引言第23页
    2.2 实验材料和设备第23-25页
        2.2.1 实验材料第23-24页
        2.2.2 实验仪器第24页
        2.2.3 主要试剂的配制第24-25页
    2.3 实验方法第25-26页
        2.3.1 PC12细胞的培养、复苏与冻存第25页
        2.3.2 MTT实验第25页
        2.3.3 PC12细胞形态学观察第25-26页
        2.3.4 Hochest33342染色第26页
        2.3.5 线粒体荧光探针(Mito-Red)检测线粒体的形态第26页
        2.3.6 线粒体膜电位的检测第26页
    2.4 统计学分析第26-27页
    2.5 实验结果第27-32页
        2.5.1 H_2O_2对细胞活力的影响第27页
        2.5.2 H_2O_2对PC12细胞形态学的影响第27-29页
        2.5.3 H_2O_2对细胞凋亡的影响第29页
        2.5.4 H_2O_2对线粒体形态的影响第29-30页
        2.5.5 H_2O_2对线粒体膜电位的影响第30-32页
    2.6 讨论第32页
    2.7 小结第32-33页
3 葛根素对PC12细胞氧化应激损伤的保护作用第33-46页
    3.1 引言第33页
    3.2 实验材料与设备第33-35页
        3.2.1 实验材料第33-34页
        3.2.2 实验设备第34页
        3.2.3 主要试剂的配制第34-35页
    3.3 实验方法第35-37页
        3.3.1 PC12细胞形态学观察第35页
        3.3.2 MTT实验第35页
        3.3.3 Hochest33342染色第35页
        3.3.4 线粒体荧光探针(Mito-Red)检测线粒体的形态第35-36页
        3.3.5 线粒体膜电位的检测第36页
        3.3.6 蛋白的提取与定量第36页
        3.3.7 MDA的检测第36-37页
        3.3.8 T-SOD的检测第37页
    3.4 统计学分析第37-38页
    3.5 实验结果第38-44页
        3.5.1 葛根素对PC12细胞活力的影响第38页
        3.5.2 葛根素对PC12细胞形态学的影响第38-39页
        3.5.3 葛根素对PC12细胞凋亡的影响第39-40页
        3.5.4 葛根素对PC12细胞线粒体的影响第40-41页
        3.5.5 葛根素对PC12细胞线粒体膜电位的影响第41-43页
        3.5.6 葛根素对PC12细胞MDA的影响第43页
        3.5.7 葛根素对PC12细胞T-SOD的影响第43-44页
    3.6 讨论第44-45页
    3.7 小结第45-46页
4 葛根素对PC12细胞的保护作用机制第46-66页
    4.1 引言第46页
    4.2 实验材料与设备第46-49页
        4.2.1 实验材料第46-47页
        4.2.2 实验设备第47-48页
        4.2.3 主要试剂的配制第48-49页
    4.3 试验方法第49-52页
        4.3.1 PC12细胞形态学观察第49页
        4.3.2 MTT实验第49页
        4.3.3 Hochest33342染色第49页
        4.3.4 线粒体荧光探针(Mito-Red)检测线粒体的形态第49页
        4.3.5 ERβ在PC12细胞的定位第49页
        4.3.6 胞质和线粒体蛋白质的提取与定量第49-50页
        4.3.7 MDA的检测第50页
        4.3.8 T-SOD的检测第50页
        4.3.9 ERβ-siRNA转染第50-51页
        4.3.10 蛋白免疫印迹(Westernblot)第51-52页
    4.4 统计学分析第52页
    4.5 实验结果第52-64页
        4.5.1 ICI182,780对PC12细胞活力的影响第52-53页
        4.5.2 ICI182,780对PC12细胞形态学的影响第53-54页
        4.5.3 ICI182,780对PC12细胞凋亡的影响第54页
        4.5.4 ICI182,780对PC12细胞线粒体形态的影响第54-55页
        4.5.5 ICI182,780对PC12细胞线粒体膜电位的影响第55-56页
        4.5.6 ICI182,780对PC12细胞MDA的影响第56-57页
        4.5.7 ICI182,780对PC12细胞T-SOD的影响第57-58页
        4.5.8 ERβ在PC12细胞中的分布第58-59页
        4.5.9 ERβ对PC12细胞活力的影响第59-60页
        4.5.10 ERβ对PC12细胞中线粒体相关蛋白Drp1表达的影响第60-62页
        4.5.11 ERβ对PC12细胞中线粒体相关蛋白Opa1表达的影响第62-63页
        4.5.12 ERβ对PC12细胞中Cyt-C的影响第63-64页
    4.6 讨论第64-65页
    4.7 小结第65-66页
结论第66-67页
展望第67-68页
参考文献第68-76页
攻读硕士学位期间发表学术论文情况第76-77页
致谢第77-79页

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