中文摘要 | 第6-8页 |
Abstract | 第8-10页 |
引言 | 第11-13页 |
第一部分 海藻糖水替代机制对冻干红细胞保护作用的探讨 | 第13-25页 |
背景 | 第13-14页 |
1. 实验器材 | 第14-15页 |
1.1. 实验仪器 | 第14页 |
1.2. 实验试剂 | 第14页 |
1.3. 主要溶液配制 | 第14-15页 |
1.3.1. 磷酸盐缓冲液配制 | 第14-15页 |
1.3.2. 冻干保护液配制 | 第15页 |
1.3.3. 复水液配制 | 第15页 |
1.3.4. PB溶液配制 | 第15页 |
1.4. 实验器材准备 | 第15页 |
1.4.1. 玻璃瓶的处理 | 第15页 |
1.4.2. 一次性塑料耗材 | 第15页 |
2. 实验步骤 | 第15-18页 |
2.1. 红细胞处理 | 第15-16页 |
2.2. 血影细胞制备 | 第16页 |
2.3. 红细胞海藻糖加载 | 第16页 |
2.4. 海藻糖提取及浓度检测 | 第16-17页 |
2.5. 红细胞的冷冻干燥 | 第17页 |
2.6. 冷冻干燥红细胞复水及回收率测定 | 第17页 |
2.7. 残余水含量检测 | 第17-18页 |
2.8. 统计学分析 | 第18页 |
3. 结果 | 第18-21页 |
3.1. 海藻糖负载溶液对红细胞加载海藻糖量的影响 | 第18-19页 |
3.2. 冻干红细胞复水回收率 | 第19页 |
3.3. 海藻糖负载冻干红细胞残余水含量 | 第19-20页 |
3.4. 冻干红细胞与冻干血影细胞残余水含量 | 第20-21页 |
4. 讨论和结论 | 第21-22页 |
参考文献 | 第22-25页 |
第二部分 冻干红细胞复水过程研究 | 第25-35页 |
背景 | 第25页 |
1. 实验器材 | 第25-26页 |
2. 实验步骤 | 第26-28页 |
2.1. 红细胞处理 | 第26页 |
2.2. 冻干保护剂添加和红细胞的冷冻干燥 | 第26页 |
2.3. 不同温度下冷冻干燥红细胞复水 | 第26-27页 |
2.4. 差示量热扫描仪检测相变温度 | 第27页 |
2.5. 环境扫描电镜观察冻干红细胞细胞体积变化 | 第27-28页 |
2.6. 统计学分析 | 第28页 |
3. 实验结果 | 第28-31页 |
3.1. 冻干血影细胞的相变温度 | 第28-30页 |
3.2. 不同温度下冻干红细胞复水后的回收率 | 第30页 |
3.3. 复水过程中的细胞体积变化 | 第30-31页 |
4. 讨论和结论 | 第31-33页 |
参考文献 | 第33-35页 |
第三部分 脂质体对冻干红细胞膜的作用研究 | 第35-47页 |
背景 | 第35-36页 |
1. 实验器材 | 第36-37页 |
1.1. 实验仪器 | 第36页 |
1.2. 实验试剂 | 第36页 |
1.3. 主要溶液配制 | 第36-37页 |
1.3.1. 含脂质体的冻干保护剂配制 | 第36-37页 |
1.3.2. 含脂质体的复水液和洗脱液 | 第37页 |
1.3.3. 碱性缓冲液配制 | 第37页 |
2. 实验步骤 | 第37-40页 |
2.1. 红细胞的处理 | 第37页 |
2.2. 冻干保护剂添加及分组 | 第37页 |
2.3. 红细胞冰冻干燥 | 第37-38页 |
2.4. 冻干红细胞复水 | 第38页 |
2.5. 复水后冻干红细胞洗脱 | 第38页 |
2.6. 复水洗脱后回收率测定 | 第38页 |
2.7. 复水洗脱后红细胞功能检测 | 第38-40页 |
2.7.1. 红细胞ATP含量检测 | 第38-39页 |
2.7.2. 血红蛋白浓度检测 | 第39-40页 |
2.7.3. 细胞SOD活力检测 | 第40页 |
2.8. 统计学分析 | 第40页 |
3. 实验结果 | 第40-43页 |
3.1. 脂质体不同添加组洗脱后红细胞回收率 | 第40-41页 |
3.2. 脂质体不同添加组洗脱后红细胞ATP含量 | 第41-42页 |
3.3. 脂质体不同添加组血红蛋白情况 | 第42-43页 |
3.4. 脂质体不同添加组洗脱后红细胞SOD活力 | 第43页 |
4. 讨论和结论 | 第43-45页 |
参考文献 | 第45-47页 |
综述 海藻糖和脂质体对冻干红细胞作用研究进展 | 第47-56页 |
1. 冷冻干燥损伤 | 第48页 |
2. 海藻糖的应用 | 第48-50页 |
3. 脂质体的应用 | 第50-52页 |
4. 展望 | 第52页 |
参考文献 | 第52-56页 |
中英文对照表 | 第56-57页 |
攻读学位期间学术成果情况 | 第57-59页 |
致谢 | 第59-61页 |