摘要 | 第3-5页 |
ABSTRACT | 第5-7页 |
第1章 绪论 | 第11-29页 |
1.1 研究背景 | 第11-28页 |
1.1.1 脑出血的研究现状 | 第11-12页 |
1.1.2 SICH后血脑屏障的改变 | 第12-16页 |
1.1.3 SICH后脑水肿的形成 | 第16-21页 |
1.1.4 SICH后脑水肿过程中红细胞的作用 | 第21-22页 |
1.1.5 SICH后脑水肿过程中水通道蛋白-4(AQP-4)的进展研究 | 第22-25页 |
1.1.6 总结与展望 | 第25-28页 |
1.2 研究目的 | 第28页 |
1.3 研究意义 | 第28-29页 |
第2章 材料与方法 | 第29-38页 |
2.1 材料来源和主要设备 | 第29-30页 |
2.1.1 主要实验试剂 | 第29页 |
2.1.2 主要实验设备 | 第29-30页 |
2.1.3 动物分组 | 第30页 |
2.2 实验方法 | 第30-32页 |
2.2.1 麻醉 | 第30页 |
2.2.2 全血标本的制备 | 第30-31页 |
2.2.3 红细胞标本的制备 | 第31页 |
2.2.4 自发性脑出血动物模型的制作 | 第31页 |
2.2.5 神经功能缺损评分(neurological deficit score NDS))方法 | 第31-32页 |
2.2.6 标本采集 | 第32页 |
2.3 检测方法 | 第32-37页 |
2.3.1 血脑屏障通透性的检测 | 第32-33页 |
2.3.2 脑含水量的检测 | 第33页 |
2.3.3 大鼠脑组织切片的制备 | 第33页 |
2.3.4 病理切片HE染色步骤 | 第33-34页 |
2.3.5 免疫组化检测AQP-4 的表达 | 第34-35页 |
2.3.6 AQP-4mRNA的检测 | 第35-37页 |
2.4 统计学方法 | 第37-38页 |
第3章 结果 | 第38-50页 |
3.1 实验动物情况 | 第38页 |
3.2 病理学检测 | 第38-40页 |
3.2.1 肉眼观察 | 第38-39页 |
3.2.2 HE染色光镜观察 | 第39-40页 |
3.3 免疫组化检测AQP-4 蛋白 | 第40-42页 |
3.4 脑组织EB含量的变化 | 第42-44页 |
3.4.1 EB标准曲线 | 第42页 |
3.4.2 各组 6h时EB含量变化 | 第42-43页 |
3.4.3 各组 1d时EB含量变化 | 第43页 |
3.4.4 各组 3d时EB含量变化 | 第43页 |
3.4.5 各组 5d时EB含量变化 | 第43-44页 |
3.4.6 各组内不同时间点脑组织EB含量的比较 | 第44页 |
3.5 AQP-4 mRNA的表达 | 第44-47页 |
3.5.1 各组 6h时AQP-4 mRNA的表达 | 第44-45页 |
3.5.2 各组 1d时AQP-4 mRNA的表达 | 第45页 |
3.5.3 各组 3d时AQP-4 mRNA的表达 | 第45-46页 |
3.5.4 各组 5d时AQP-4 mRNA的表达 | 第46页 |
3.5.5 各组内不同时间点AQP-4 m RNA表达的比较 | 第46-47页 |
3.6 脑组织含水量的变化 | 第47-50页 |
3.6.1 各组 6h时脑含水量的变化 | 第47页 |
3.6.2 各组 1d时脑含水量的变化 | 第47-48页 |
3.6.3 各组 3d时脑含水量的变化 | 第48页 |
3.6.4 各组 5d时脑含水量的变化 | 第48-49页 |
3.6.5 各组内不同时间点脑含水量的比较 | 第49-50页 |
第4章 讨论 | 第50-56页 |
4.1 动物模型 | 第50-51页 |
4.2 SICH后脑水肿形成过程中红细胞的作用 | 第51-52页 |
4.3 SICH后脑水肿过程中与BBB通透性的关系 | 第52-54页 |
4.4 SICH后脑水肿形成过程中AQP-4 的作用 | 第54页 |
4.5 结语 | 第54-56页 |
第5章 结论 | 第56-57页 |
参考文献 | 第57-66页 |
缩略语词汇表 | 第66-67页 |
附录 附图 | 第67-69页 |
致谢 | 第69-70页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第70页 |