| 缩略词对照表 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-6页 |
| Summary | 第6-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-20页 |
| 1. 双峰驼概述 | 第11页 |
| 2. 驼奶的研究背景 | 第11-12页 |
| 3. 驼奶成分的基本介绍 | 第12-14页 |
| 3.1 蛋白质 | 第12-13页 |
| 3.2 脂肪 | 第13页 |
| 3.3 乳糖 | 第13-14页 |
| 3.4 矿物质 | 第14页 |
| 3.5 维生素 | 第14页 |
| 4. 驼奶在辅助治疗疾病方面的研究进展 | 第14-17页 |
| 4.1 驼奶对糖尿病的辅助治疗作用 | 第14-15页 |
| 4.2 驼奶对癌症的辅助治疗作用 | 第15-16页 |
| 4.3 驼奶对丙型肝炎的辅助治疗作用 | 第16页 |
| 4.4 驼奶对糖尿病性肾病（DN）的辅助治疗作用 | 第16-17页 |
| 4.5 驼奶对其他疾病的辅助治疗作用 | 第17页 |
| 5. 细胞凋亡 | 第17页 |
| 6. 细胞凋亡的诱导因子及调控机制 | 第17-18页 |
| 7. 糖尿病 | 第18-19页 |
| 8. 本研究的目的和意义 | 第19-20页 |
| 第二章 双峰驼奶对2型糖尿病大鼠的生理生化指标的影响 | 第20-26页 |
| 1. 材料与方法 | 第20-22页 |
| 1.1 材料 | 第20-21页 |
| 1.1.1 实验仪器 | 第20页 |
| 1.1.2 实验试剂 | 第20-21页 |
| 1.1.3 双峰驼奶 | 第21页 |
| 1.1.4 实验动物 | 第21页 |
| 1.2 方法 | 第21-22页 |
| 1.2.1 2 型糖尿病大鼠模型的构建 | 第21页 |
| 1.2.2 实验动物的分组及处理 | 第21页 |
| 1.2.3 2 型糖尿病大鼠的体重值 | 第21-22页 |
| 1.2.4 2 型糖尿病大鼠的糖耐量 | 第22页 |
| 1.2.5 2 型糖尿病大鼠的空腹血糖（fasting plasma glucose, FPG）值和空腹胰岛素（FINS）值 | 第22页 |
| 2. 结果 | 第22-24页 |
| 2.1 双峰驼奶对2型糖尿病大鼠体重的影响 | 第22-23页 |
| 2.2 双峰驼奶对2型糖尿病大鼠糖耐量的影响 | 第23页 |
| 2.3 双峰驼奶对2型糖尿病大鼠空腹血糖（FPG）和空腹胰岛素（FINS）的影响 | 第23-24页 |
| 3. 讨论 | 第24-26页 |
| 第三章 双峰驼奶对2型糖尿病大鼠肝脏和肾脏组织形态的影响 | 第26-34页 |
| 1. 材料与方法 | 第27-29页 |
| 1.1 材料 | 第27页 |
| 1.1.1 实验仪器 | 第27页 |
| 1.1.2 实验试剂 | 第27页 |
| 1.1.3 主要试剂的配制 | 第27页 |
| 1.1.4 实验组织 | 第27页 |
| 1.2 方法 | 第27-29页 |
| 1.2.1 制备石蜡切片 | 第27-28页 |
| 1.2.2 H.E染色（苏木精-伊红染色法） | 第28页 |
| 1.2.3 显微镜观察并拍照 | 第28-29页 |
| 2. H.E染色结果 | 第29-33页 |
| 2.1 C组和DMC组大鼠的肝脏组织 | 第29-30页 |
| 2.2 C组和DMC组大鼠的肾脏组织 | 第30-31页 |
| 2.3 LCM、HCM和MTH治疗后的肝脏组织 | 第31-32页 |
| 2.4 LCM、HCM和MTH治疗后的肾脏组织 | 第32-33页 |
| 3. 讨论 | 第33-34页 |
| 第四章 双峰驼奶对2型糖尿病大鼠肝脏和肾脏细胞凋亡的影响 | 第34-54页 |
| 1. 材料与方法 | 第35-44页 |
| 1.1 材料 | 第35-38页 |
| 1.1.1 实验仪器 | 第35-36页 |
| 1.1.2 实验试剂 | 第36-37页 |
| 1.1.3 实验相关试剂的配制 | 第37-38页 |
| 1.2 实验方法 | 第38-44页 |
| 1.2.1 免疫组织化学法（ABC法） | 第38-39页 |
| 1.2.2 蛋白免疫印记杂交法（Westorn Blot） | 第39-41页 |
| 1.2.2.1 大鼠肝脏和肾脏的总蛋白提取 | 第39-40页 |
| 1.2.2.2 总蛋白的定量 | 第40页 |
| 1.2.2.3 SDS-PAGE电泳操作过程 | 第40-41页 |
| 1.2.2.4 转膜与封闭 | 第41页 |
| 1.2.2.5 抗体杂交 | 第41页 |
| 1.2.2.6 显影与定影 | 第41页 |
| 1.2.3 实时荧光定量反应 | 第41-44页 |
| 1.2.3.1 大鼠肝脏和肾脏组织总RNA的提取 | 第41-42页 |
| 1.2.3.2 RNA反转录 | 第42-43页 |
| 1.2.3.3 引物设计 | 第43-44页 |
| 1.2.3.4 RT-qPCR反应 | 第44页 |
| 1.3 统计分析 | 第44页 |
| 2. 结果 | 第44-54页 |
| 2.1 免疫组织化学检测结果 | 第44-48页 |
| 2.1.1 肝脏组织中Bax蛋白的免疫组织化学标记 | 第44-45页 |
| 2.1.2 肝脏组织中Bcl-2 蛋白的免疫组织化学标记 | 第45-46页 |
| 2.1.3 肾脏组织中Bax蛋白的免疫组织化学标记 | 第46-47页 |
| 2.1.4 肾脏组织中Bcl-2 蛋白的免疫组织化学标记 | 第47页 |
| 2.1.5 肾脏组织中NF-κB蛋白的免疫组织化学标记 | 第47-48页 |
| 2.2 Western Blot检测结果 | 第48-50页 |
| 2.2.1 T2DM大鼠肝脏组织Bax和Bcl-2 蛋白的相对表达量 | 第48-49页 |
| 2.2.2 T2DM大鼠肾脏组织Bax、Bcl-2 和NF-κB蛋白的相对表达量 | 第49-50页 |
| 2.3 实时荧光定量的检测结果 | 第50-54页 |
| 2.3.1 T2DM大鼠肝脏组织凋亡相关基因表达量 | 第50-51页 |
| 2.3.2 T2DM大鼠肾脏组织凋亡相关基因表达量 | 第51-54页 |
| 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 作者简介 | 第64-65页 |
| 导师简介 | 第65-67页 |
| 学位论文版权认定和使用授权书 | 第67页 |
