| 缩略语表 | 第7-9页 |
| 中文摘要 | 第9-15页 |
| Abstract | 第15-20页 |
| 前言 | 第22-24页 |
| 文献回顾 | 第24-47页 |
| 第一部分 蛛网膜下腔出血早期脑损伤及其机制 | 第24-32页 |
| 第二部分 HIF-1 及其在神经系统的作用机制 | 第32-40页 |
| 第三部分 槲皮素及其在神经系统的保护作用机制 | 第40-47页 |
| 第一部分 HIF-1 在实验性 SAH 模型对大鼠海马细胞凋亡和认知功能障碍保护作用的研究 | 第47-58页 |
| 1 材料 | 第47页 |
| 1.1 动物 | 第47页 |
| 1.2 试剂 | 第47页 |
| 1.3 仪器 | 第47页 |
| 2 方法 | 第47-51页 |
| 2.1 动物分组 | 第47-48页 |
| 2.2 大鼠蛛网膜下腔二次出血模型建立 | 第48页 |
| 2.3 动物灌注及取材 | 第48-49页 |
| 2.4 免疫组织化学染色 | 第49页 |
| 2.5 Western blot 检测 | 第49-50页 |
| 2.6 ELISA 测定 | 第50页 |
| 2.7 Morris 水迷宫测试 | 第50-51页 |
| 2.8 统计学分析 | 第51页 |
| 3 结果 | 第51-55页 |
| 3.1 生理参数测定 | 第51页 |
| 3.2 SAH 模型大鼠海马 HIF-1 、VEGF、EPO、GLUT1 的表达变化及 YC-1 对表其影响 | 第51-52页 |
| 3.3 SAH 模型大鼠海马神经元的凋亡及 YC-1 对其影响 | 第52-54页 |
| 3.4 SAH 模型大鼠认知功能障碍及 YC-1 对其影响 | 第54-55页 |
| 4 讨论 | 第55-58页 |
| 第二部分 HIF-1 在实验性 SAH 模型对大鼠血脑屏障的作用研究 | 第58-65页 |
| 1 材料 | 第58页 |
| 1.1 动物 | 第58页 |
| 1.2 试剂 | 第58页 |
| 1.3 仪器 | 第58页 |
| 2 方法 | 第58-61页 |
| 2.1 动物分组 | 第58-59页 |
| 2.2 大鼠蛛网膜下腔二次出血模型建立 | 第59页 |
| 2.3 Western blot 检测 | 第59-60页 |
| 2.4 伊文思蓝（Evans blue）染色 | 第60-61页 |
| 2.5 统计学分析 | 第61页 |
| 3 结果 | 第61-63页 |
| 3.1 SAH 模型大鼠脑 Occludin、Claudin-5 的蛋白表达及 YC-1 对其影响 | 第61-62页 |
| 3.2 SAH 模型大鼠 BBB 的损伤及 YC-1 对其影响 | 第62-63页 |
| 4 讨论 | 第63-65页 |
| 第三部分 槲皮素在实验性 SAH 模型对大鼠脑氧化应激和脑水肿作用的研究 | 第65-76页 |
| 1 材料 | 第65页 |
| 1.1 动物 | 第65页 |
| 1.2 试剂 | 第65页 |
| 1.3 仪器 | 第65页 |
| 2 方法 | 第65-69页 |
| 2.1 动物分组 | 第65-66页 |
| 2.2 大鼠蛛网膜下腔二次出血模型建立 | 第66页 |
| 2.3 动物灌注及取材 | 第66-67页 |
| 2.4 神经功能缺损评分 | 第67页 |
| 2.5 免疫组织化学染色 | 第67页 |
| 2.6 Western blot 检测 | 第67-68页 |
| 2.7 抗氧化酶活性测定和脂质过氧化程度检测 | 第68页 |
| 2.8 脑组织水含量测定 | 第68-69页 |
| 2.9 统计学分析 | 第69页 |
| 3 结果 | 第69-73页 |
| 3.1 槲皮素对 SAH 模型大鼠神经功能评分的影响 | 第69-70页 |
| 3.2 槲皮素对 SAH 模型大鼠脑皮层氧化应激的影响 | 第70-71页 |
| 3.3 槲皮素对 SAH 模型大鼠海马 caspase-3 表达的影响 | 第71-72页 |
| 3.4 槲皮素对 SAH 模型大鼠脑水肿的影响 | 第72-73页 |
| 4 讨论 | 第73-76页 |
| 第四部分 槲皮素在实验性 SAH 模型对大鼠基底动脉血管痉挛的作用研究 | 第76-85页 |
| 1 材料 | 第76页 |
| 1.1 动物 | 第76页 |
| 1.2 试剂 | 第76页 |
| 1.3 仪器 | 第76页 |
| 2 方法 | 第76-80页 |
| 2.1 动物分组 | 第76-77页 |
| 2.2 大鼠蛛网膜下腔二次出血模型建立 | 第77页 |
| 2.3 动物灌注及取材 | 第77-78页 |
| 2.4 大鼠基底动脉 HE 染色 | 第78页 |
| 2.5 Western blot 检测 | 第78-79页 |
| 2.6 ELISA 测定 | 第79页 |
| 2.7 统计学分析 | 第79-80页 |
| 3 结果 | 第80-82页 |
| 3.1 SAH 模型大鼠基底动脉面积及厚度的变化及槲皮素对其影响 | 第80-81页 |
| 3.2 SAH 模型大鼠基底动脉 eNOS 蛋白表达变化及槲皮素对其影响 | 第81-82页 |
| 3.3 SAH 模型大鼠血清 eNOS 浓度变化及槲皮素对其影响 | 第82页 |
| 4 讨论 | 第82-85页 |
| 第五部分 槲皮素在实验性 SAH 模型对大鼠海马 HIF-1 的调节作用研究 | 第85-91页 |
| 1 材料 | 第85页 |
| 1.1 动物 | 第85页 |
| 1.2 试剂 | 第85页 |
| 1.3 仪器 | 第85页 |
| 2 方法 | 第85-88页 |
| 2.1 动物分组 | 第85-86页 |
| 2.2 大鼠蛛网膜下腔二次出血模型建立 | 第86页 |
| 2.3 动物灌注及取材 | 第86页 |
| 2.4 免疫组织化学染色 | 第86-87页 |
| 2.5 Western blot 测定 | 第87-88页 |
| 2.6 统计学分析 | 第88页 |
| 3 结果 | 第88-89页 |
| 3.1 SAH 模型大鼠海马 CA1 区 HIF-1 的形态表达变化及槲皮素对其影响 | 第88页 |
| 3.2 SAH 模型大鼠海马 HIF-1 蛋白的表达变化及槲皮素对其影响 | 第88-89页 |
| 4 讨论 | 第89-91页 |
| 小结 | 第91-92页 |
| 参考文献 | 第92-112页 |
| 附录 | 第112-113页 |
| 研究成果 | 第113页 |
