| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 目录 | 第7-9页 |
| 引言 | 第9-10页 |
| 第一章 文献研究 | 第10-19页 |
| 1.1 阳春砂研究概况 | 第10页 |
| 1.1.1 阳春砂地理分布 | 第10页 |
| 1.1.2 阳春砂药用及食用价值 | 第10页 |
| 1.2 多糖研究概况 | 第10-18页 |
| 1.2.1 多糖的提取方法 | 第11-12页 |
| 1.2.2 多糖的除杂 | 第12-13页 |
| 1.2.3 多糖的分离纯化方法 | 第13-16页 |
| 1.2.4 多糖的生物活性研究 | 第16-18页 |
| 1.3 小结 | 第18-19页 |
| 第二章 阳春砂提取条件的优化 | 第19-31页 |
| 2.1 材料及试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第19页 |
| 2.1.2 仪器及试剂 | 第19-20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-22页 |
| 2.2.1 阳春砂多糖提取 | 第20页 |
| 2.2.2 多糖提取率测定 | 第20-21页 |
| 2.2.3 单因素实验设计 | 第21页 |
| 2.2.4 响应面实验设计 | 第21-22页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第22-29页 |
| 2.3.1 多糖检测考察结果 | 第22-24页 |
| 2.3.2 单因素实验考察结果 | 第24-26页 |
| 2.3.3 模型预测及统计分析 | 第26-27页 |
| 2.3.4 等高线图及响应面图分析 | 第27-29页 |
| 2.3.5 提取参数优化及模型验证 | 第29页 |
| 2.4 本章小结 | 第29-31页 |
| 第三章 阳春砂多糖的分离及纯化 | 第31-35页 |
| 3.1 材料与试剂 | 第31页 |
| 3.2 实验方法 | 第31-32页 |
| 3.2.1 DEAE-纤维素色谱法初步分离 | 第32页 |
| 3.2.2 葡聚糖凝胶色谱法进一步纯化 | 第32页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第32-34页 |
| 3.3.1 ASP的DEAE-纤维素-52色谱法初步分离 | 第32-33页 |
| 3.3.2 ASP初步纯化产物的葡聚糖凝胶色谱法进一步纯化 | 第33-34页 |
| 3.4 本章小结 | 第34-35页 |
| 第四章 阳春砂抗氧化活性 | 第35-40页 |
| 4.1 材料及仪器 | 第35-36页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第35页 |
| 4.1.2 仪器及试剂 | 第35-36页 |
| 4.2 实验方法 | 第36-37页 |
| 4.2.1 ASP对超氧阴离子自由基(·O_2~-)的清除作用 | 第36页 |
| 4.2.2 ASP对羟基自由基(·OH~-)的清除作用 | 第36-37页 |
| 4.2.3 多糖对1,1二苯基苦基苯肼自由基(·DPPH~-)的清除作用 | 第37页 |
| 4.3 实验结果与讨论 | 第37-39页 |
| 4.3.1 ASP清除超氧阴离子自由基活性 | 第37-38页 |
| 4.3.2 ASP清除过氧化氢活性 | 第38页 |
| 4.3.3 ASP清除DPPH~-自由基活性 | 第38-39页 |
| 4.4 本章小结 | 第39-40页 |
| 第五章 阳春砂多糖对小鼠免疫功能影响作用研究 | 第40-45页 |
| 5.1 材料与设备 | 第40页 |
| 5.1.1 实验材料及动物 | 第40页 |
| 5.1.2 仪器设备及试剂 | 第40页 |
| 5.2 实验方法 | 第40-42页 |
| 5.2.1 试剂配制 | 第40-41页 |
| 5.2.2 实验分组和给药 | 第41页 |
| 5.2.3 小鼠碳粒廓清实验 | 第41页 |
| 5.2.4 血清溶血素的测定 | 第41-42页 |
| 5.2.5 统计学方法 | 第42页 |
| 5.3 结果 | 第42-43页 |
| 5.3.1 ASP对小鼠免疫器官的影响 | 第42页 |
| 5.3.2 ASP对小鼠腹腔巨噬细胞的吞噬廓清能力和速度的影响 | 第42-43页 |
| 5.3.3 ASP对免疫低下小鼠溶血素抗体生成的影响 | 第43页 |
| 5.4 讨论 | 第43-44页 |
| 5.5 本章小结 | 第44-45页 |
| 结语 | 第45-47页 |
| 参考文献 | 第47-55页 |
| 附录 | 第55-56页 |
| 附录1：英文缩略词 | 第55-56页 |
| 在校期间发表论文情况 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57页 |
