| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-13页 |
| 缩略词表 | 第13-15页 |
| 前言 | 第15-18页 |
| 第一部分 NTCSC的培养、诱导分化及鉴定 | 第18-32页 |
| 一、前言 | 第18-20页 |
| 二、材料与方法 | 第20-26页 |
| (一) 试剂与设备 | 第20-23页 |
| (二) 动物来源 | 第23页 |
| (三) 实验方法 | 第23-26页 |
| 三、结果 | 第26-28页 |
| (一) 骨髓NTCSC的培养 | 第26-28页 |
| (一) 骨髓NTCSC的鉴定 | 第28页 |
| (二) 骨髓NTCSC向神经元细胞诱导 | 第28页 |
| (三) 骨髓NTCSC向雪旺氏细胞诱导 | 第28页 |
| 四、讨论 | 第28-31页 |
| (一) 骨髓NTCSC的发现 | 第28-30页 |
| (二) 骨髓NTCSC的生物学特性 | 第30页 |
| (三) 骨髓NTCSC向神经元细胞的分化 | 第30-31页 |
| 五、结论 | 第31-32页 |
| 第二部分 神经元性组织工程化神经的构建 | 第32-39页 |
| 一、前言 | 第32-33页 |
| 二、材料与方法 | 第33-35页 |
| (一) 试剂与设备 | 第33-34页 |
| (二) 动物来源 | 第34页 |
| (三) 实验方法 | 第34-35页 |
| 三、结果 | 第35-37页 |
| (一) 脱细胞神经支架的制备 | 第35页 |
| (二) 脱细胞神经支架的检测 | 第35页 |
| (三) 组织工程化神经的体外构建 | 第35-37页 |
| 四、讨论 | 第37-38页 |
| (一) 脱细胞神经支架的制备 | 第37-38页 |
| (二) 植入细胞在支架内的生长、分化、迁移 | 第38页 |
| 五、结论 | 第38-39页 |
| 第三部分 神经元性组织工程化神经移植修复犬坐骨神经长段缺损的体内研究 | 第39-61页 |
| 一、前言 | 第39-40页 |
| 二、材料与方法 | 第40-47页 |
| (一) 试剂与设备 | 第40-42页 |
| (二) 动物来源 | 第42页 |
| (三) 实验方法 | 第42-47页 |
| 三、结果 | 第47-59页 |
| (一) 犬坐骨神经缺损的动物模型制备 | 第47页 |
| (二) 神经元性组织工程化神经移植 | 第47-48页 |
| (三) 动物行为学观察 | 第48-53页 |
| (四) 逆行追踪 | 第53页 |
| (五) 神经移植体的形态结构变化 | 第53-58页 |
| (六) 腓肠肌蛋白质含量的测定 | 第58-59页 |
| 四、讨论 | 第59-60页 |
| (一) 外周神经的微环境对于移植神经元细胞的影响 | 第59页 |
| (二) 干细胞源性神经元在修复外周神经缺损中的作用 | 第59-60页 |
| (三) 骨骼肌的变化是判断神经修复效果的直接指标 | 第60页 |
| 五、结论 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-67页 |
| 全文小结 | 第67-68页 |
| 创新点和意义 | 第68-69页 |
| 综述 | 第69-85页 |
| 在读期间发表和待发表的论文 | 第85-86页 |
| 致谢 | 第86页 |