| 论文一 | 第7-17页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| 英文摘要 | 第9-11页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 1.材料和方法 | 第11-12页 |
| 2. 临床表现 | 第12页 |
| 3. 手术方法 | 第12页 |
| 4. 术后处理 | 第12页 |
| 5.评价效果 | 第12-13页 |
| 6.统计学处理 | 第13页 |
| 结果 | 第13页 |
| 讨论 | 第13-15页 |
| 结论 | 第15-16页 |
| 参考文献 | 第16-17页 |
| 论文二 | 第17-41页 |
| 中文摘要 | 第17-19页 |
| 英文摘要 | 第19-21页 |
| 前言 | 第21-22页 |
| 材料和方法 | 第22-28页 |
| 1. 材料和试剂 | 第22-24页 |
| 1.1 主要试剂 | 第22-23页 |
| 1.2 标本 | 第23页 |
| 1.3 所用溶液的配置 | 第23页 |
| 1.4 主要器材 | 第23-24页 |
| 2. 实验方法 | 第24-27页 |
| 2.1 软骨细胞的提取和培养 | 第24-25页 |
| 2.2 微流控芯片的制作 | 第25-27页 |
| 2.3 软骨细胞在细胞培养池中的接种 | 第27页 |
| 2.4 软骨细胞的细胞免疫荧光染色 | 第27页 |
| 3 统计学处理 | 第27-28页 |
| 结果 | 第28-33页 |
| 3.1 大鼠软骨细胞的原代培养 | 第28页 |
| 3.2.大鼠软骨细胞于芯片中的培养 | 第28页 |
| 3.3.细胞培养池中剪切力大小和分布的数值模拟 | 第28-29页 |
| 3.5 单纯 FSS，FSS+P38 抑制剂(浓度为 10ng/ml)，FSS+TNF-α | 第29-30页 |
| 3.6 FSS、FSS+P38MAPK 抑制剂(浓度为 10ng/ml)、FSS+TNF-α | 第30-32页 |
| 3.8 FSS 对于软骨细胞 Glut-1 影响 | 第32-33页 |
| 讨论 | 第33-37页 |
| 结论 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-41页 |
| 综述 | 第41-48页 |
| 参考文献 | 第46-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |