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主要穹窿蛋白介导宿主抗病毒先天免疫及分子机制

目录第5-9页
中文摘要第9-11页
Abstract第11-12页
第一章 丙型肝炎病毒(HCV)第13-20页
    1.1 HCV的生活周期第13-14页
    1.2 HCV的结构蛋白与非结构蛋白第14-18页
        1.2.1 Core蛋白第14页
        1.2.2 包膜糖蛋白(E1和E2)第14-15页
        1.2.3 p7蛋白第15页
        1.2.4 NS2蛋白第15页
        1.2.5 NS3蛋白第15-16页
        1.2.6 NS4A蛋白第16页
        1.2.7 NS4B蛋白第16页
        1.2.8 NS5A蛋白第16-17页
        1.2.9 NS5B蛋白第17-18页
    1.3 HCV的细胞培养模型第18页
    1.4 HCV与免疫系统第18-19页
    1.5 HCV的治疗第19-20页
第二章 主要穹窿蛋白(MVP)第20-26页
    2.1 穹窿蛋白(vault)第20-21页
    2.2 MVP的细胞定位第21页
    2.3 MVP与耐药性第21页
    2.4 MVP的功能第21-25页
        2.4.1 MVP与细胞凋亡第22页
        2.4.2 MVP与干扰素γ第22-23页
        2.4.3 MVP与肿瘤抑制因子(PTEN)第23页
        2.4.4 MVP与络氨酸蛋白酶(Src)第23-24页
        2.4.5 MVP与细胞压力反应第24页
        2.4.6 MVP与组成型光形态生成因子1(COP1)第24-25页
    2.5 MVP与病毒第25-26页
第三章 Ⅰ型干扰素第26-41页
    3.1 干扰素的分类第26页
    3.2 干扰素的产生途径第26-34页
        3.2.1 TLR-dependent pathways第27-31页
        3.2.2 TLR-independent pathways第31-33页
        3.2.3 调节IFN表达的转录因子第33-34页
    3.3 Ⅰ型干扰素的效应途径第34-41页
        3.3.1 Ⅰ型干扰素受体第34页
        3.3.2 Ⅰ型干扰素诱导的经典信号通路第34-36页
        3.3.3 Ⅰ型干扰素诱导的非经典信号通路第36-37页
        3.3.4 干扰素刺激基因(ISGs)第37-41页
第四章 丙型肝炎病毒(HCV)诱导主要穹窿蛋白(MVP)表达第41-62页
    4.1 试验材料第41-42页
        4.1.1 临床样本第41页
        4.1.2 细胞与病毒第41-42页
        4.1.3 试剂第42页
    4.2 实验方法第42-55页
        4.2.1 蛋白纯化第42-43页
        4.2.2 酶联免疫吸附测定(ELISA)第43-44页
        4.2.3 PBMC细胞分离第44-45页
        4.2.4 Real-Time PCR第45-46页
        4.2.5 蛋白免疫印迹(Western Blot)第46-50页
        4.2.6 细胞培养基(以DMEM为例)与胰酶的配制第50-51页
        4.2.7 细胞冻存(以T25细胞瓶为例)第51页
        4.2.8 细胞复苏第51-52页
        4.2.9 免疫组织化学(免疫组化)第52页
        4.2.10 HCV JFH-1克隆的细胞培养第52-53页
        4.2.11 HCV滴度的测定第53-55页
    4.3 实验结果第55-60页
        4.3.1 血液结果第55-56页
        4.3.2 免疫组化结果第56-58页
        4.3.3 IFN-α不能诱导MVP表达第58页
        4.3.4 HCV JFH-1对MVP表达的影响第58-60页
    4.4 讨论第60-62页
第五章 丙型肝炎病毒NS5A蛋白通过转录因子NF-κB和Sp1调控MVP的转录第62-75页
    5.1 材料第62-63页
        5.1.1 质粒和菌种第62页
        5.1.2 试剂盒以及其他试剂第62-63页
    5.2 实验方法第63-69页
        5.2.1 质粒提取第63-64页
        5.2.2 细胞培养第64页
        5.2.3 细胞转染第64-65页
        5.2.4 荧光素酶活性的测定第65-66页
        5.2.5 染色体免疫沉淀(Chip)第66-68页
        5.2.6 Real-time PCR与Western blot第68-69页
    5.3 实验结果第69-73页
        5.3.1 HCV NS5A蛋白诱导MVP表达第69-70页
        5.3.2 HCV NS5A蛋白诱导MVP表达需要NF-κ B和Sp1绑定元件第70-72页
        5.3.3 HCV NS5A蛋白诱导转录因子NF-κ B和Sp1绑定到MVP启动子上第72-73页
    5.4 讨论第73-75页
第六章 主要穹窿蛋白(MVP)抑制丙型肝炎病毒(HCV)复制第75-80页
    6.1 材料第75页
    6.2 实验方法第75页
        6.2.1 细胞培养及病毒扩增第75页
        6.2.2 Real-time PCR和Western blot第75页
    6.3 实验结果第75-79页
        6.3.1 过表达MVP抑制HCV复制第75-76页
        6.3.2 将MVP干扰后促进HCV复制第76-79页
    6.4 讨论第79-80页
第七章 主要穹窿蛋白(MVP)促进了Ⅰ型干扰素(IFN)的表达第80-92页
    7.1 材料第80页
    7.2 实验方法第80-82页
        7.2.1 细胞培养及PBMC细胞分离第80页
        7.2.2 细胞核提取物的制备(6孔细胞板为例)第80-81页
        7.2.3 Real-time PCR和Western blot第81页
        7.2.4 IFN α、IFNβ蛋白检测第81页
        7.2.5 免疫荧光(immunofluorescence)第81-82页
        7.2.6 芯片分析(Microarray Analysis)第82页
    7.3 实验结果第82-90页
        7.3.1 芯片结果第82-83页
        7.3.2 MVP诱导IFN α/β的产生和分泌第83-84页
        7.3.3 MVP诱导IRF-7的表达第84-86页
        7.3.4 MVP激活NF-κ B信号通路第86-87页
        7.3.5 MVP促进IRF-7和NF-K B入核第87-89页
        7.3.6 MVP激活IFN下游信号通路第89-90页
    7.4 讨论第90-92页
第八章 主要穹窿蛋白(MVP)干扰RNA对病毒诱导Ⅰ型干扰素表达的影响第92-98页
    8.1 材料第92页
    8.2 实验方法第92-93页
        8.2.1 细胞培养第92页
        8.2.2 IFN α、IFNβ蛋白检测第92页
        8.2.3 Western blot和Real-time PCR第92页
        8.2.4 荧光色素酶活力测定第92-93页
        8.2.5 细胞核提取物的制备第93页
    8.3 实验结果第93-96页
        8.3.1 sh-MVP抑制VSV诱导的IFN-α/β的激活第93-94页
        8.3.2 sh-MVP抑制VSV诱导的IRF7/NF-κB的激活第94-95页
        8.3.3 sh-MVP抑制VSV诱导的IRF7/NF-κ B的入核第95-96页
    8.4 讨论第96-98页
第九章 主要穹窿蛋白(MVP)与其他病毒之间的关系第98-104页
    9.1 材料第98页
    9.2 实验方法第98-99页
        9.2.1 Western blot和Real-time PCR第98页
        9.2.2 病毒蚀斑实验(plaque assays)第98-99页
        9.2.3 血球凝集实验(hemagglutination assay)第99页
    9.3 实验结果第99-102页
        9.3.1 MVP与VSV之间的关系第99-100页
        9.3.2 MVP与IAV之间的关系第100-101页
        9.3.3 MVP与EV71之间的关系第101-102页
    9.4 讨论第102-104页
参考文献第104-112页
附录I常用试剂及其配制一览表第112-113页
附录II论文中使用的Realtime-PCR弓丨物第113-114页
附录Ⅲ博士研究生期间发表及待发表的论文第114-115页
致谢第115页

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