英文缩写索引 | 第6-8页 |
Abstract | 第8-14页 |
摘要 | 第15-21页 |
前言 | 第21-24页 |
第一章 pMSCV RORγ-TAP稳定转染HepG2 细胞株的获得 | 第24-53页 |
前言 | 第24-25页 |
第一节 RORγ基因的克隆及pMSCVpuro RORγ-TAP融合表达载体的构建 | 第25-42页 |
材料与试剂 | 第25-26页 |
实验方法 | 第26-35页 |
实验结果 | 第35-42页 |
第二节 稳定转染HepG2 细胞株的建立及鉴定 | 第42-51页 |
材料与试剂 | 第42-44页 |
实验方法 | 第44-47页 |
实验结果 | 第47-51页 |
讨论 | 第51-53页 |
第二章 HepG2 细胞中RORγ相互作用蛋白的捕获和质谱测序鉴定 | 第53-70页 |
前言 | 第53-54页 |
第一节 HepG2 细胞中RORγ相互作用蛋白的捕获 | 第54-61页 |
材料与试剂 | 第54-56页 |
实验方法 | 第56-59页 |
实验结果 | 第59-61页 |
第二节 RORγ相互作用蛋白的质谱测序及分析 | 第61-68页 |
试剂和仪器 | 第61-62页 |
实验方法 | 第62页 |
实验结果 | 第62-68页 |
讨论 | 第68-70页 |
第三章 RORγ相互作用蛋白的验证及初步功能分析 | 第70-84页 |
前言 | 第70-71页 |
第一节 HepG2 细胞中RORγ相互作用蛋白的验证 | 第71-75页 |
材料与试剂 | 第71-72页 |
实验方法 | 第72-73页 |
实验结果 | 第73-75页 |
第二节 HepG2 细胞中siRNA介导的RIP140 和HSP90 的下调抑制了CYP2C8 基因的表达 | 第75-82页 |
材料与试剂 | 第75-76页 |
实验方法 | 第76-79页 |
实验结果 | 第79-82页 |
讨论 | 第82-84页 |
全文结论 | 第84-86页 |
致谢 | 第86-87页 |
参考文献 | 第87-91页 |
文献综述一 蛋白质相互作用组学研究策略最新进展 | 第91-99页 |
参考文献 | 第97-99页 |
文献综述二 Th17 细胞在乙型肝炎中的重要作用 | 第99-112页 |
参考文献 | 第107-112页 |
研究生期间文章、专利及项目 | 第112-114页 |