| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 英文缩略词 | 第13-21页 |
| 1 绪论 | 第21-37页 |
| 1.1 芥子油苷的发现和分布 | 第21-22页 |
| 1.2 芥子油苷的合成和降解 | 第22-25页 |
| 1.3 芥子油苷的生物学功能 | 第25-26页 |
| 1.3.1 芥子油苷的抗癌作用 | 第25页 |
| 1.3.2 芥子油苷在植物防卫反应中的作用 | 第25-26页 |
| 1.4 外界环境对芥子油苷的影响 | 第26-29页 |
| 1.4.1 非生物因素对芥子油苷的影响 | 第27-28页 |
| 1.4.2 生物因素对芥子油苷的影响 | 第28-29页 |
| 1.5 信号分子对芥子油苷合成的调控 | 第29-33页 |
| 1.5.1 茉莉酸和水杨酸对芥子油苷的调控 | 第29-31页 |
| 1.5.2 油菜素甾醇类化合物对芥子油苷的调控 | 第31-32页 |
| 1.5.3 糖信号对芥子油苷的调控 | 第32-33页 |
| 1.6 青花菜芽菜中芥子油苷的调控 | 第33-35页 |
| 1.7 立题依据及研究目标 | 第35-37页 |
| 2 不同糖处理对青花菜芽菜中芥子油苷的影响及其机理 | 第37-52页 |
| 2.1 引言 | 第37页 |
| 2.2 材料与方法 | 第37-40页 |
| 2.2.1 实验材料及试剂 | 第37-38页 |
| 2.2.2 材料种植及处理方法 | 第38页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第38-40页 |
| 2.2.3.1 芥子油苷的分离纯化与分析测定 | 第38-39页 |
| 2.2.3.2 花青素的提取与检测 | 第39页 |
| 2.2.3.3 黑芥子酶活性测定 | 第39页 |
| 2.2.3.4 FRAP法测定抗氧化能力 | 第39页 |
| 2.2.3.5 可溶性蛋白含量的测定 | 第39-40页 |
| 2.2.3.6 RNA提取 | 第40页 |
| 2.2.3.7 实时定量PCR检测 | 第40页 |
| 2.2.3.8 数据分析 | 第40页 |
| 2.3 结果与分析 | 第40-50页 |
| 2.3.1 不同糖处理对青花菜芽菜发芽率和生物量的影响 | 第40-42页 |
| 2.3.2 不同糖处理对青花菜芽菜中芥子油苷含量的影响 | 第42-43页 |
| 2.3.3 不同糖处理对青花菜芽菜中花青素含量的影响 | 第43-44页 |
| 2.3.4 不同糖处理对青花菜芽菜抗氧化能力的影响 | 第44-45页 |
| 2.3.5 蔗糖对青花菜芽菜中花青素合成相关基因的影响 | 第45-48页 |
| 2.3.6 蔗糖对青花菜芽菜中芥子油苷合成基因表达的影响 | 第48页 |
| 2.3.7 不同糖处理对青花菜芽菜中黑芥子酶活性的影响 | 第48-49页 |
| 2.3.8 不同糖处理对拟南芥中芥子油苷含量的影响 | 第49-50页 |
| 2.4 讨论与小结 | 第50-52页 |
| 3 JA对拟南芥中芥子油苷合成的影响 | 第52-64页 |
| 3.1 引言 | 第52-53页 |
| 3.2 材料与方法 | 第53-55页 |
| 3.2.1 实验材料及试剂 | 第53-54页 |
| 3.2.2 材料种植及处理方法 | 第54页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第54-55页 |
| 3.2.3.1 芥子油苷的分离纯化 | 第54页 |
| 3.2.3.2 芥子油苷的分析测定 | 第54页 |
| 3.2.3.3 RNA的提取 | 第54页 |
| 3.2.3.4 实时定量PCR检测 | 第54页 |
| 3.2.3.5 数据分析 | 第54-55页 |
| 3.3 结果与分析 | 第55-62页 |
| 3.3.1 JA对拟南芥野生型及其突变体中芬子油苷的影响 | 第55-60页 |
| 3.3.1.1 JA对拟南芥地上部野生型及其突变体中脂肪类芥子油苷的影响 | 第55-56页 |
| 3.3.1.2 JA对拟南芥地上部野生型及其突变体中吲哚类芥子油苷的影响 | 第56-57页 |
| 3.3.1.3 JA对拟南芥地下部野生型及其突变体中脂肪类芥子油苷的影响 | 第57-59页 |
| 3.3.1.4 JA对拟南芥地下部野生型及其突变体中吲哚类芥子油苷的影响 | 第59-60页 |
| 3.3.2 MED参与JA对芥子油苷合成的调控 | 第60-62页 |
| 3.3.2.1 MED缺失突变体med2.5中芥子油苷的含量分析及其对JA的响应 | 第60-61页 |
| 3.3.2.2 JA处理后med2.5中芥子油苷合成相关转录因子的表达情况 | 第61-62页 |
| 3.4 讨论与小结 | 第62-64页 |
| 4 JA和糖对拟南芥中芥子油苷合成的影响 | 第64-84页 |
| 4.1 引言 | 第64页 |
| 4.2 材料与方法 | 第64-69页 |
| 4.2.1 实验材料及试剂 | 第64-65页 |
| 4.2.2 材料种植及处理方法 | 第65页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第65-69页 |
| 4.2.3.1 芥子油苷的分离纯化 | 第65页 |
| 4.2.3.2 芥子油苷的分析测定 | 第65页 |
| 4.2.3.3 RNA提取 | 第65页 |
| 4.2.3.4 实时定量PCR检测 | 第65页 |
| 4.2.3.5 数据分析 | 第65-69页 |
| 4.3 | 第69-81页 |
| 4.3.2 JA和葡萄糖共同处理对拟南芬中芬子油苷合成相关基因表达的影响 | 第69页 |
| 4.3.3 葡萄糖处理对JA信号转导突变体中芥子油苷含量的影响 | 第69-73页 |
| 4.3.3.1 葡萄糖处理对JA信号转导突变体coi1-2中芥子油苷含量的影响 | 第69-71页 |
| 4.3.3.2 葡萄糖处理对JA信号转导突变体jin1,jar1中芥子油苷含量的影响 | 第71-73页 |
| 4.3.4 JA处理对葡萄糖信号转导突变体中芥子油苷含量的影响 | 第73-78页 |
| 4.3.4.1 JA处理对葡萄糖受体突变体rgs1-2中芥子油苷含量的影响 | 第73-75页 |
| 4.3.4.2 JA和葡萄糖共同处理对糖不敏感突变体abi5-7中芥子油苷含量的影响 | 第75-78页 |
| 4.3.5 SA在JA与葡萄糖协同调控芥子油苷合成与积累过程中的作用 | 第78-81页 |
| 4.3.5.1 低浓度SA在JA和葡萄糖协同调控芥子油苷积累过程中的作用 | 第78-80页 |
| 4.3.5.2 高浓度SA在JA和葡萄糖协同调控芥子油苷积累过程中的作用 | 第80-81页 |
| 4.4 讨论与小结 | 第81-84页 |
| 5 氯化钠对青花菜芽菜中芥子油苷的影响 | 第84-91页 |
| 5.1 引言 | 第84页 |
| 5.2 材料与方法 | 第84-85页 |
| 5.2.1 实验材料及试剂 | 第84页 |
| 5.2.2 材料种植及处理方法 | 第84页 |
| 5.2.3 实验方法 | 第84-85页 |
| 5.2.3.1 芥子油苷的分离纯化与分析测定 | 第84页 |
| 5.2.3.2 萝卜硫素含量的测定 | 第84-85页 |
| 5.2.3.3 黑芥子酶活性测定 | 第85页 |
| 5.2.3.4 数据分析 | 第85页 |
| 5.3 结果与分析 | 第85-89页 |
| 5.3.1 氯化钠处理对青花菜芽菜发芽率和生物量的影响 | 第85-86页 |
| 5.3.2 氯化钠处理对青花菜芽菜芥子油苷含量的影响 | 第86-88页 |
| 5.3.3 氯化钠处理对青花菜芽菜中黑芥子酶活性的影响 | 第88页 |
| 5.3.4 氯化钠处理对青花菜芽菜中萝卜硫素含量的影响 | 第88-89页 |
| 5.4 讨论与小结 | 第89-91页 |
| 6 BR和氯化钠处理对青花菜芽菜中芥子油苷的影响 | 第91-99页 |
| 6.1 引言 | 第91-92页 |
| 6.2 材料与方法 | 第92-93页 |
| 6.2.1 实验材料及试剂 | 第92页 |
| 6.2.2 材料种植及处理方法 | 第92页 |
| 6.2.3 实验方法 | 第92-93页 |
| 6.2.3.1 芥子油苷的分离纯化与分析测定 | 第92页 |
| 6.2.3.2 维生素C的提取及分析 | 第92页 |
| 6.2.3.3 黑芥子酶活性测定 | 第92页 |
| 6.2.3.4 FRAP法测定抗氧化能力 | 第92页 |
| 6.2.3.5 数据分析 | 第92-93页 |
| 6.3 结果与分析 | 第93-97页 |
| 6.3.1 BR和氯化钠处理对青花菜芽菜发芽率和生物量的影响 | 第93-94页 |
| 6.3.2 BR和氯化钠处理对青花菜芽菜芥子油苷含量的影响 | 第94页 |
| 6.3.3 BR和氯化钠处理对青花菜芽菜中维生素C含量的影响 | 第94-95页 |
| 6.3.4 BR和氯化钠处理对青花菜芽菜中黑芥子酶活性的影响 | 第95-97页 |
| 6.3.5 BR和氯化钠处理对青花菜芽菜中抗氧化能力的影响 | 第97页 |
| 6.4 讨论与小结 | 第97-99页 |
| 7 BR对拟南芥中芥子油苷合成的影响 | 第99-118页 |
| 7.1 引言 | 第99-100页 |
| 7.2 材料与方法 | 第100-102页 |
| 7.2.1 实验材料及试剂 | 第100页 |
| 7.2.2 材料种植及处理方法 | 第100-101页 |
| 7.2.3 实验方法 | 第101-102页 |
| 7.2.3.1 芥子油苷的分离纯化 | 第101页 |
| 7.2.3.2 芥子油苷的分析测定 | 第101页 |
| 7.2.3.3 RNA提取 | 第101页 |
| 7.2.3.4 实时定量PCR检测 | 第101页 |
| 7.2.3.5 过表达植株的构建 | 第101页 |
| 7.2.3.6 浸花法转化拟南芥 | 第101-102页 |
| 7.2.3.7 转基因种子的筛选与鉴定 | 第102页 |
| 7.2.3.8 数据分析 | 第102页 |
| 7.3 结果与分析 | 第102-115页 |
| 7.3.1 BR对拟南芥野生型Col-0中芥子油苷合成的影响 | 第102-104页 |
| 7.3.2 BR合成缺失突变体cpd和过量表达植株DWF4-ox中芥子油苷含量的变化 | 第104-106页 |
| 7.3.3 BR受体突变体bri1-5中芥子油苷含量的变化 | 第106-107页 |
| 7.3.4 BR信号转导增强植株35S-BZR1/bzr1-1D和besl-D中芥子油苷含量的变化 | 第107-108页 |
| 7.3.5 BR信号转导增强植株35S-BZR1/bzr1-1D和besl-D中芥子油苷合成基因的表达 | 第108-109页 |
| 7.3.6 BR处理对芥子油苷突变体myb28,myb29,myb34,myb51和myb122的影响 | 第109-110页 |
| 7.3.7 DET2在芥子油苷合成过程中的作用 | 第110-115页 |
| 7.3.7.1 突变体det2-1中芥子油苷的组分 | 第110-111页 |
| 7.3.7.2 突变体det2-1中芥子油苷的含量分析 | 第111-112页 |
| 7.3.7.3 突变体det2-1背景型的确定 | 第112页 |
| 7.3.7.4 det2-1中芥子油苷合成相关基因的表达 | 第112-113页 |
| 7.3.7.5 外源EBR处理对det2-1中芥子油苷含量的分析 | 第113-114页 |
| 7.3.7.6 35S-DET2转基因植株的构建及其芥子油苷含量分析 | 第114-115页 |
| 7.4 讨论与小结 | 第115-118页 |
| 8 结论,创新点与展望 | 第118-122页 |
| 8.1 结论 | 第118-119页 |
| 8.2 创新点 | 第119-120页 |
| 8.3 展望 | 第120-122页 |
| 参考文献 | 第122-142页 |
| 个人简介 | 第142-143页 |
