| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 缩略语表 | 第11-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-19页 |
| 1 土壤盐渍化对植物的影响概述 | 第13-14页 |
| 1.1 盐胁迫对植物的危害 | 第13-14页 |
| 1.2 植物响应盐胁迫的机制 | 第14页 |
| 2 植物中HKT转运蛋白研究进展 | 第14-16页 |
| 3 植物细胞中PLD和PA的生理功能研究进展 | 第16-17页 |
| 4 脂信号对动物细胞离子通道的调控 | 第17-18页 |
| 5 研究目的及意义 | 第18-19页 |
| 第二章 OsHKT1;1对水稻光合作用的影响 | 第19-27页 |
| 1 实验材料 | 第19页 |
| 1.1 水稻种子和水稻培养营养液 | 第19页 |
| 1.2 仪器和设备 | 第19页 |
| 2 实验方法 | 第19-20页 |
| 2.1 光合作用测定 | 第19-20页 |
| 2.2 叶绿素含量和生物量的测定 | 第20页 |
| 3 实验结果与分析 | 第20-24页 |
| 3.1 盐胁迫对水稻光合速率的影响 | 第20-21页 |
| 3.2 盐胁迫对水稻气孔导度和蒸腾速率的影响 | 第21-22页 |
| 3.3 盐胁迫对水稻叶绿素含量的影响 | 第22-23页 |
| 3.4 盐胁迫对水稻生物量的影响 | 第23-24页 |
| 4 讨论 | 第24-27页 |
| 第三章 脂类与钠转运体OsHKT1;1的结合 | 第27-45页 |
| 1 实验材料 | 第27-30页 |
| 1.1 菌株,质粒和培养基 | 第27页 |
| 1.2 主要试剂,溶液和试剂盒 | 第27-29页 |
| 1.3 克隆基因所用引物 | 第29-30页 |
| 2 实验方法 | 第30-40页 |
| 2.1 载体构建 | 第30-36页 |
| 2.2 GST表达载体和GST空载体转入BL21菌株 | 第36页 |
| 2.3 在BL21菌株中诱导融合蛋白表达 | 第36-37页 |
| 2.4 GST标签融合蛋白的纯化 | 第37-38页 |
| 2.5 纯化后蛋白的聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第38-39页 |
| 2.6 纯化蛋白与脂结合实验 | 第39-40页 |
| 3 实验结果与分析 | 第40-43页 |
| 3.1 目的基因表达载体的构建 | 第40-41页 |
| 3.2 GST表达载体转入BL21菌株的PCR鉴定 | 第41-42页 |
| 3.3 融合蛋白的表达与纯化 | 第42-43页 |
| 3.4 OsHKT1;1-胞内区片段2蛋白和GST标签蛋白与脂结合实验 | 第43页 |
| 4 讨论 | 第43-45页 |
| 第四章 脂对钠转运体OsHKT1;1的调控探究 | 第45-71页 |
| 1 实验材料 | 第45-48页 |
| 1.1 菌株,质粒,培养基和动物材料 | 第45页 |
| 1.2 主要试剂和溶液 | 第45-47页 |
| 1.3 克隆基因所用引物 | 第47-48页 |
| 2 实验方法 | 第48-60页 |
| 2.1 构建pGEMHE(g)表达载体 | 第48-54页 |
| 2.2 大提质粒 | 第54-55页 |
| 2.3 质粒线性化 | 第55-56页 |
| 2.4 模板除RNase | 第56-57页 |
| 2.5 体外转录 | 第57页 |
| 2.6 爪蟾卵母细胞双电极电压钳实验 | 第57-60页 |
| 3 实验结果与分析 | 第60-68页 |
| 3.1 双酶切验证构建目的基因的pGEMHE(g)表达载体 | 第60-62页 |
| 3.2 双电极电压钳检测钠转运体OsHKT1;1的活性 | 第62-64页 |
| 3.3 对卵母细胞的最大电流的统计分析结果 | 第64-65页 |
| 3.4 Na~+浓度对钠转运体OsHKT1;1活性的影响 | 第65-66页 |
| 3.5 DAG对爪蟾卵母细胞中表达的钠转运体OsHKT1;1的影响 | 第66页 |
| 3.6 PLC抑制剂U73122对钠转运体OsHKT1;1的活性影响 | 第66-67页 |
| 3.7 脂信号元件对钠转运体OsHKT1;1转运体的影响 | 第67-68页 |
| 4 讨论 | 第68-71页 |
| 全文讨论 | 第71-73页 |
| 全文结论与创新之处 | 第73-75页 |
| 参考文献 | 第75-81页 |
| 致谢 | 第81页 |
