| 摘要 | 第2-3页 |
| Abstract | 第3页 |
| 引言 | 第7-9页 |
| 1 实验对象与方法 | 第9-18页 |
| 1.1 实验对象 | 第9页 |
| 1.2 实验分组 | 第9-10页 |
| 1.2.1 适应性训练 | 第9页 |
| 1.2.2 实验条件 | 第9页 |
| 1.2.3 训练安排 | 第9-10页 |
| 1.2.4 大鼠骨骼肌取样 | 第10页 |
| 1.2.5 骨骼肌组织样品预处理 | 第10页 |
| 1.3 实验器材 | 第10-14页 |
| 1.3.1 主要仪器 | 第10-12页 |
| 1.3.2 主要试剂 | 第12-13页 |
| 1.3.3 缓冲液的制备 | 第13-14页 |
| 1.4 大鼠血乳酸浓度测量 | 第14-15页 |
| 1.5 WB法测定骨骼肌中NNMT表达 | 第15-17页 |
| 1.5.1 组织总蛋白质的提取 | 第15页 |
| 1.5.2 考马斯亮蓝G-250法测定肌肉蛋白质含量 | 第15-16页 |
| 1.5.2.1 考马斯亮蓝G-250试剂 | 第15页 |
| 1.5.2.2 标准曲线的绘制 | 第15-16页 |
| 1.5.2.3 样品测定 | 第16页 |
| 1.5.3 聚丙烯酰胺凝胶的配制 | 第16页 |
| 1.5.4 电泳 | 第16页 |
| 1.5.5 转膜 | 第16-17页 |
| 1.5.6 封闭 | 第17页 |
| 1.5.7 杂交 | 第17页 |
| 1.5.8 压片曝光 | 第17页 |
| 1.6 数理统计方法 | 第17-18页 |
| 2 实验结果 | 第18-22页 |
| 2.1 各组SD大鼠在训练后的血乳酸浓度 | 第18页 |
| 2.2 各组SD大鼠在训练后的NNMT表达量 | 第18-22页 |
| 3 讨论 | 第22-23页 |
| 3.1 快、慢肌中NNMT表达量的差异 | 第22页 |
| 3.2 不同能量代谢方式对NNMT表达的影响 | 第22-23页 |
| 4 结论 | 第23-24页 |
| 5 文献综述 | 第24-36页 |
| 5.1 NNMT和烟酰胺及辅酶I的关系 | 第24-26页 |
| 5.1.1 关于NNMT和烟酰胺及辅酶I | 第24页 |
| 5.1.2 烟酰胺——NAD+循环 | 第24-26页 |
| 5.2 NNMT基因的研究现状 | 第26-27页 |
| 5.3 NNMT促进烟酰胺甲基化的机制 | 第27页 |
| 5.4 NNMT与能量代谢 | 第27-29页 |
| 5.4.1 MNA超载促进能量代谢 | 第27-28页 |
| 5.4.2 SAM与能量代谢 | 第28-29页 |
| 5.5 NNMT与癌症 | 第29-30页 |
| 5.5.1 癌细胞的特点：有氧糖酵解 | 第29页 |
| 5.5.2 NNMT减弱癌及癌旁细胞的甲基化能力 | 第29-30页 |
| 5.6 NNMT与老年病 | 第30-32页 |
| 5.6.1 老年病 | 第30页 |
| 5.6.2 NNMT与阿尔兹海默氏病和帕金森病 | 第30-31页 |
| 5.6.3 NNMT与Ⅱ型糖尿病 | 第31页 |
| 5.6.4 Nampt与心脑血管疾病 | 第31页 |
| 5.6.5 NNMT对肥胖的影响 | 第31-32页 |
| 5.7 骨骼肌纤维的结构、类型及特征 | 第32-36页 |
| 5.7.1 骨骼肌的结构 | 第32页 |
| 5.7.2 骨骼肌的分型 | 第32-33页 |
| 5.7.2.1 根据颜色分型 | 第32页 |
| 5.7.2.2 根据ATP酶活性分型 | 第32-33页 |
| 5.7.2.3 根据氧化能力分型 | 第33页 |
| 5.7.2.4 根据免疫组化结果分型 | 第33页 |
| 5.7.2.5 SDS-PAGE电泳法分型 | 第33页 |
| 5.7.3 快、慢肌的特性 | 第33-36页 |
| 5.7.3.1 快慢肌的组织形态差异 | 第33-34页 |
| 5.7.3.2 快、慢肌的生理学差异 | 第34页 |
| 5.7.3.3 快肌和慢肌的组织化学和代谢特点 | 第34页 |
| 5.7.3.4 快、慢肌的结构性差异 | 第34-36页 |
| 参考文献 | 第36-42页 |
| 致谢 | 第42页 |