| 中文摘要 | 第3-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 引言 | 第14-16页 |
| 第一部分 吉马酮对OGD损伤大鼠脑微血管内皮细胞的保护作用 | 第16-29页 |
| 1 材料与方法 | 第16-20页 |
| 1.1 试验药物及配制 | 第16页 |
| 1.2 动物 | 第16页 |
| 1.3 试剂 | 第16-18页 |
| 1.4 仪器 | 第18页 |
| 1.5 实验方法 | 第18-20页 |
| 1.5.1 BMECs细胞提取 | 第18页 |
| 1.5.2 BMECs细胞鉴定 | 第18-19页 |
| 1.5.3 MTT法检测细胞增殖率及细胞毒性 | 第19页 |
| 1.5.4 OGD模型的建立与实验分组 | 第19-20页 |
| 1.5.5 吉马酮对各相关因子的影响及检测方法 | 第20页 |
| 1.6 数据统计 | 第20页 |
| 2 结果 | 第20-26页 |
| 2.1 显微镜下BMECs细胞形态 | 第20-21页 |
| 2.2 BMECs细胞免疫组化鉴定 | 第21页 |
| 2.3 不同浓度吉马酮对BMECs细胞增殖的影响 | 第21-22页 |
| 2.4 各组细胞上清液中 6-keto-PGF1α、NO和ET-1 含量的变化 | 第22-24页 |
| 2.5 吉马酮对OGD损伤的BMECs细胞中t-PA和PAI-1 的影响 | 第24-25页 |
| 2.6 吉马酮对OGD损伤的BMECs细胞上清液中MDA、SOD、LDH和GSH-Px的影响 | 第25-26页 |
| 3 小结与讨论 | 第26-29页 |
| 第二部分 桂郁金挥发油和吉马酮对H_2O_2诱导的脐静脉血管内皮细胞氧化应激损伤的保护作用 | 第29-55页 |
| 1 实验材料 | 第29-30页 |
| 1.1 实验用药及配置 | 第29页 |
| 1.2 实验试剂 | 第29-30页 |
| 1.3 实验用细胞株 | 第30页 |
| 1.4 实验仪器 | 第30页 |
| 2 实验方法 | 第30-34页 |
| 2.1 利用HPLC法检测桂郁金挥发油中的吉马酮的含量 | 第30-31页 |
| 2.1.1 供试品溶液的制备 | 第30-31页 |
| 2.1.2 对照品溶液的制备 | 第31页 |
| 2.1.3 色谱条件 | 第31页 |
| 2.2 利用GC-MS法分析桂郁金挥发油中各成分 | 第31页 |
| 2.3 不同浓度H_2O_2对HUVECs活性的影响 | 第31-32页 |
| 2.4 氧化损伤模型的建立及MTT比色法检测桂郁金挥发油和吉马酮对H_2O_2损伤HUVECs活性的影响 | 第32页 |
| 2.5 实验分组及细胞培养上清液和细胞裂解液的制备 | 第32-33页 |
| 2.6 利用Hoechst 33258 荧光染色法观察桂郁金挥发油和吉马酮对H_2O_2诱导HUVECs细胞的凋亡情况的影响 | 第33页 |
| 2.7 RT-PCR检测细胞中Bax mRNA、Bcl-2 mRNA和Caspase-3 mRNA表达 | 第33-34页 |
| 2.8 数据统计 | 第34页 |
| 3 实验结果 | 第34-51页 |
| 3.1 桂郁金挥发油中吉马酮的含量测定 | 第34-35页 |
| 3.2 桂郁金挥发油的成分分析 | 第35-40页 |
| 3.3 不同浓度H_2O_2对HUVECs活性的影响 | 第40-41页 |
| 3.4 桂郁金挥发油和吉马酮对H_2O_2损伤的HUVECs活性的影响 | 第41-43页 |
| 3.5 桂郁金挥发油和吉马酮对H_2O_2损伤的HUVECs细胞上清液中PGI2、TXB2、ET-1、NO和T-NOS含量的影响 | 第43-45页 |
| 3.6 桂郁金挥发油和吉马酮对H_2O_2损伤的HUVECs细胞裂解液中t-PA和PAI-1 的影响 | 第45-46页 |
| 3.7 桂郁金挥发油和吉马酮对H_2O_2损伤的HUVECs细胞上清液中MDA、SOD和GSH-Px的影响 | 第46-47页 |
| 3.8 桂郁金挥发油和吉马酮对H_2O_2损伤的HUVECs细胞中IL-6 和TNF-α变化的影响 | 第47-48页 |
| 3.9 Hoechst 33258荧光染色观察不同浓度桂郁金挥发油和吉马酮对H_2O_2诱导HUVECs细胞的凋亡情况的影响 | 第48-49页 |
| 3.10 不同浓度桂郁金挥发油和吉马酮对H_2O_2诱导HUVECs细胞中BaxmRNA、Bcl-2 mRNA和Caspase-3 mRNA表达的影响情况 | 第49-51页 |
| 4 小结与讨论 | 第51-55页 |
| 第三部分 桂郁金挥发油和吉马酮对ox-LDL诱导的脐静脉血管内皮细胞损伤的保护作用 | 第55-68页 |
| 1 实验材料 | 第55页 |
| 1.1 实验用药 | 第55页 |
| 1.2 实验试剂 | 第55页 |
| 1.3 实验用细胞株 | 第55页 |
| 1.4 实验仪器 | 第55页 |
| 2 实验方法 | 第55-57页 |
| 2.1 CCK-8 测定不同浓度ox-LDL对HUVES细胞存活率的影响 | 第55-56页 |
| 2.2 ox-LDL模型的建立与实验分组 | 第56页 |
| 2.3 桂郁金挥发油和吉马酮对各相关因子的影响及检测方法 | 第56-57页 |
| 2.4 RT-PCR检测细胞中Bax mRNA、Bcl-2 mRNA和Caspase-3 mRNA表达 | 第57页 |
| 2.5 数据统计 | 第57页 |
| 3 实验结果 | 第57-65页 |
| 3.1 CCK-8 测定不同浓度ox-LDL对HUVES细胞存活率的影响 | 第57-58页 |
| 3.2 吉马酮和桂郁金挥发油对ox-LDL损伤HUVECs细胞上清液中和ET-1、NO和eNOS含量的影响 | 第58-60页 |
| 3.3 吉马酮和桂郁金挥发油对ox-LDL损伤HUVECs细胞上清液中TXB_2和PGI_2含量的影响 | 第60-61页 |
| 3.4 吉马酮和桂郁金挥发油对ox-LDL损伤HUVECs细胞裂解液中t-PA和PAI-1 的影响 | 第61页 |
| 3.5 吉马酮和桂郁金挥发油对ox-LDL损伤HUVECs细胞上清液中LDH和GSH-Px的影响 | 第61-62页 |
| 3.6 吉马酮和桂郁金挥发油对ox-LDL损伤HUVECs细胞裂解液中APC和COX_2的影响 | 第62-63页 |
| 3.7 RT-PCR检测ox-LDL损伤细胞中Bax mRNA、Bcl-2 mRNA、Caspase-3mRNA和LOX-1 mRNA表达 | 第63-65页 |
| 4 小结与讨论 | 第65-68页 |
| 结论 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-74页 |
| 中英文缩写词汇表 | 第74-75页 |
| 附录 | 第75-76页 |
| 综述 吉马酮药理作用的研究进展 | 第76-89页 |
| 参考文献 | 第84-89页 |
| 致谢 | 第89-90页 |
| 攻读学位期间获得的科研成果 | 第90-91页 |
| 个人简历 | 第91页 |
