| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-27页 |
| 1.1 肿瘤光学治疗研究进展 | 第13-16页 |
| 1.1.1 肿瘤光动力学治疗研究进展 | 第13-15页 |
| 1.1.2 肿瘤光热治疗研究进展 | 第15-16页 |
| 1.2 光学治疗试剂的研究进展 | 第16-20页 |
| 1.2.1 金属配合物治疗剂 | 第16-18页 |
| 1.2.2 荧光染料类治疗剂 | 第18-20页 |
| 1.3 纳米粒子类治疗试剂 | 第20-26页 |
| 1.3.1 纳米粒子作为药物运载工具 | 第20-21页 |
| 1.3.2 作为光敏剂的纳米粒子 | 第21-23页 |
| 1.3.3 作为光热试剂的纳米粒子 | 第23-26页 |
| 1.4 研究意义和设计思路 | 第26-27页 |
| 第二章 BODIPY-Mn纳米组装体的合成及低氧肿瘤的MRI和光治疗 | 第27-51页 |
| 2.1 实验部分 | 第27-32页 |
| 2.1.1 仪器与试剂 | 第27-28页 |
| 2.1.2 锰配合物（PdpaMn）的合成 | 第28-29页 |
| 2.1.3 组装体Mn-DBA的合成 | 第29页 |
| 2.1.4 纳米Mn-DBA@BSA的制备 | 第29页 |
| 2.1.5 纳米Mn-DBA@BSA-PF的制备 | 第29页 |
| 2.1.6 原子吸收测定金属离子Mn2+的含量 | 第29-30页 |
| 2.1.7 紫外光谱测定荧光染料DBA的含量 | 第30页 |
| 2.1.8 光驱动催化水氧化实验 | 第30页 |
| 2.1.9 细胞毒性检测与乳酸脱氢酶抑制检测 | 第30-31页 |
| 2.1.10 光热效应的检测 | 第31页 |
| 2.1.11 原子吸收测定体内肿瘤和肾脏中Mn2+的含量 | 第31页 |
| 2.1.12 动物体内的磁共振成像 | 第31页 |
| 2.1.13 动物体内的光热治疗 | 第31-32页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第32-50页 |
| 2.2.1 锰配合物（PdpaMn）晶体结构测定 | 第32-34页 |
| 2.2.2 纳米Mn-DBA@BSA-PF的合成及红外表征 | 第34-36页 |
| 2.2.3 组装体及纳米Mn-DBA@BSA-PF的紫外及TEM表征 | 第36-38页 |
| 2.2.4 组装体的荧光分析 | 第38-39页 |
| 2.2.5 X射线衍射（XRD）和拉曼光谱 | 第39-40页 |
| 2.2.6 纳米Mn-DBA@BSA-PF的稳定性分析 | 第40-41页 |
| 2.2.7 纳米Mn-DBA@BSA-PF的催化水氧化 | 第41-42页 |
| 2.2.8 光热效应 | 第42-44页 |
| 2.2.9 细胞毒性及乳酸脱氢酶的抑制 | 第44-45页 |
| 2.2.10 动物体内MRI | 第45-47页 |
| 2.2.11 动物体内治疗 | 第47-50页 |
| 2.3 本章小结 | 第50-51页 |
| 第三章 Fe~(3+)适配体修饰的光反应器在乳酸氧化和肿瘤光学治疗方面的研究 | 第51-72页 |
| 3.1 实验部分 | 第51-54页 |
| 3.1.1 仪器与药品 | 第51页 |
| 3.1.2 组装体Mn-DOX的合成 | 第51-52页 |
| 3.1.3 纳米Mn-D@B的制备 | 第52页 |
| 3.1.4 纳米Mn-D@BPFe-A的制备及修饰 | 第52页 |
| 3.1.5 原子吸收测定金属离子Mn2+和Fe~(3+)的含量 | 第52页 |
| 3.1.6 光驱动催化水氧化和细胞毒性检测 | 第52页 |
| 3.1.7 JC-1 标记线粒体膜电位（MMP）的测定 | 第52-53页 |
| 3.1.8 细胞成像 | 第53页 |
| 3.1.9 免疫印迹法测定HepG-2 细胞中HIF-1α 和Glut-1 的表达量 | 第53页 |
| 3.1.10 原子吸收测定体内肿瘤和肾脏中Mn2+的含量 | 第53页 |
| 3.1.11 动物体内肿瘤抑制 | 第53-54页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第54-71页 |
| 3.2.1 纳米Mn-D@BPFe-A的合成及红外表征 | 第54-55页 |
| 3.2.2 紫外光谱 | 第55-56页 |
| 3.2.3 透射电镜（TEM） | 第56页 |
| 3.2.4 组装体荧光分析 | 第56-57页 |
| 3.2.5 纳米Mn-D@BPFe-A的稳定性分析 | 第57-58页 |
| 3.2.6 纳米Mn-D@BPFe-A的催化水氧化 | 第58-60页 |
| 3.2.7 纳米Mn-D@BPFe-A的光热效应 | 第60-61页 |
| 3.2.8 细胞成像及肿瘤内Mn和DOX含量分析 | 第61-63页 |
| 3.2.9 细胞毒性及实体瘤内乳酸含量 | 第63-66页 |
| 3.2.10 线粒体膜电位 | 第66-68页 |
| 3.2.11 动物体内治疗 | 第68-71页 |
| 3.3 本章小结 | 第71-72页 |
| 第四章 锰-硫化铜纳米蛋白复合物的合成、表征及光驱动水氧化性能的研究 | 第72-89页 |
| 4.1 实验部分 | 第72-74页 |
| 4.1.1 仪器与药品 | 第72页 |
| 4.1.2 纳米CuS的合成[104] | 第72页 |
| 4.1.3 组装体Mn-CuS的制备 | 第72-73页 |
| 4.1.4 纳米Mn-CuS@BSA-FA的制备 | 第73页 |
| 4.1.5 原子吸收测定金属离子Mn2+、Cu2+的含量 | 第73页 |
| 4.1.6 纳米Mn-CuS@BSA-FA对乳酸的氧化 | 第73页 |
| 4.1.7 细胞内丙酮酸含量和ATP含量的测定 | 第73-74页 |
| 4.1.8 乳酸脱氢酶活性实验 | 第74页 |
| 4.1.9 光热效应的检测 | 第74页 |
| 4.1.10 免疫印迹法测定在HepG-2 细胞中HIF-1α 和Glut-1 的表达量 | 第74页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第74-87页 |
| 4.2.1 纳米Mn-CuS@BSA-FA的表征 | 第74-77页 |
| 4.2.2 乳酸的氧化 | 第77-78页 |
| 4.2.3 乳酸氧化条件的研究 | 第78-80页 |
| 4.2.4 乳酸脱氢酶活性检测 | 第80-82页 |
| 4.2.5 纳米颗粒对丙酮酸转换为乳酸过程的抑制 | 第82-84页 |
| 4.2.6 纳米化合物的光热效应 | 第84-85页 |
| 4.2.7 肿瘤细胞内丙酮酸含量变化 | 第85-86页 |
| 4.2.8 细胞毒性检测及蛋白表达 | 第86-87页 |
| 4.3 本章小结 | 第87-89页 |
| 第五章 结论与展望 | 第89-91页 |
| 参考文献 | 第91-102页 |
| 致谢 | 第102-103页 |
| 硕士期间成果 | 第103页 |
