摘要 | 第4-7页 |
ABSTRACT | 第7-10页 |
引言 | 第14-15页 |
第一章 生境修复研究及生物扰动研究进展 | 第15-27页 |
一、我国海洋富营养化趋势及生境修复研究进展 | 第15-23页 |
1. 滩涂的富营养化现状及原因 | 第15-16页 |
2. 富营养化生物修复研究进展 | 第16-21页 |
3. 研究展望 | 第21-23页 |
二、生物扰动对沉积物氮循环及微生物群落结构的影响 | 第23-27页 |
1. 生物扰动对沉积物氮循环影响的生态学意义 | 第23-24页 |
2. 生物扰动对氮循环影响的研究进展 | 第24-27页 |
第二章 海洋异养好氧硝化―反硝化细菌的筛选、鉴定及能力测试 | 第27-38页 |
1. 前言 | 第27页 |
2. 材料与方法 | 第27-30页 |
2.1 样品及培养基 | 第27-28页 |
2.2 好氧反硝化细菌的筛选和分离 | 第28页 |
2.3 菌株的鉴定 | 第28-29页 |
2.4 系统进化树的构建 | 第29页 |
2.5 氮盐去除能力测试 | 第29页 |
2.6 pH、盐度及C:N对菌株去除氮能力的影响 | 第29-30页 |
2.7 细菌浓度和氮盐的分析方法 | 第30页 |
2.8 统计学分析 | 第30页 |
3. 结果 | 第30-35页 |
3.1 细菌的筛选及鉴定 | 第30-32页 |
3.2 氮的去除能力比较 | 第32-34页 |
3.3 不同因子对菌株去除能力的影响 | 第34-35页 |
4. 讨论 | 第35-38页 |
4.1 细菌的鉴定 | 第35-36页 |
4.2 MD5和MD8去除氮的特性 | 第36页 |
4.3 不同因子对菌株去除氮能力的影响 | 第36-38页 |
第三章 实验室条件下生物扰动、物理扰动及微生物强化的组合作用对沉积物中营养盐去除的研究 | 第38-53页 |
1. 前言 | 第38页 |
2. 材料与方法 | 第38-41页 |
2.1 材料 | 第38-39页 |
2.2 实验设置 | 第39-40页 |
2.3 实验参数的分析 | 第40页 |
2.4 数据分析 | 第40-41页 |
3. 结果 | 第41-51页 |
3.1 单因素实验 | 第41-42页 |
3.2 多因素分析 | 第42-51页 |
4. 讨论 | 第51-53页 |
4.1 不同因子对沉积物中氮磷的影响 | 第51页 |
4.2 因子之间的关系 | 第51-52页 |
4.3 室内模拟修复实验的局限与意义 | 第52-53页 |
第四章 滩涂实地条件下生物扰动、物理扰动及微生物强化的正交组合去沉积物中营养盐去除的研究 | 第53-63页 |
1. 前言 | 第53-54页 |
2. 材料与方法 | 第54-56页 |
2.1 实验地点和采样 | 第54-55页 |
2.2 正交设计 | 第55-56页 |
2.3 沉积物和间隙水的采样 | 第56页 |
2.4 间隙水的测试分析 | 第56页 |
2.5 沉积物中总氮和总磷的测试分析 | 第56页 |
2.6 总氮和总磷的去除率 | 第56页 |
3. 结果 | 第56-60页 |
3.1 正交实验组中沉积物的总氮、总磷去除率 | 第56-58页 |
3.2 因子间的相互作用 | 第58-59页 |
3.3 间隙水的理化特征 | 第59-60页 |
4. 讨论 | 第60-63页 |
4.1 正交实验组中总氮、总磷的去除率 | 第60-61页 |
4.2 因子间的相互作用 | 第61-62页 |
4.3 间隙水中营养盐含量的影响因子 | 第62-63页 |
第五章 大型底栖动物的扰动作用对沉积物中微生物群落结构的影响 | 第63-76页 |
1. 前言 | 第63页 |
2. 材料与方法 | 第63-65页 |
2.1 实验地点及实验布置 | 第63-64页 |
2.2 沉积物和间隙水的采样 | 第64页 |
2.3 沉积物和间隙水的分析 | 第64页 |
2.4 沉积物中DNA提取、PCR扩增及illumine Miseq测序 | 第64-65页 |
2.5 实时荧光定量扩增 | 第65页 |
2.6 测序分析 | 第65页 |
2.7 分析统计方法 | 第65页 |
3. 结果 | 第65-73页 |
3.1 各组间沉积物和间隙水中营养盐特征 | 第65-67页 |
3.2 高通量序列分类组成 | 第67-69页 |
3.3 群落结构分析 | 第69-72页 |
3.4 古菌及细菌氨加单氧酶基因的丰度 | 第72-73页 |
4. 讨论 | 第73-76页 |
第六章 文蛤中肠道与沉积物中微生物群落结构的关系 | 第76-88页 |
1. 引言 | 第76页 |
2. 材料与方法 | 第76-78页 |
2.1 材料 | 第76-77页 |
2.2 文蛤肠道及沉积物DNA提取 | 第77页 |
2.3 核酸PCR扩增及illumine Miseq测序 | 第77页 |
2.4 实时荧光定量扩增 | 第77页 |
2.5 测序分析 | 第77-78页 |
2.6 分析统计方法 | 第78页 |
3. 结果 | 第78-85页 |
3.1 优质序列的获取 | 第78页 |
3.2 沉积物与肠道微生物OTU及Venn图 | 第78-79页 |
3.3 生物多样性分析 | 第79-80页 |
3.4 群落结构分析 | 第80-84页 |
3.5 沉积物和文蛤肠道中氨加单氧酶功能基因amoA丰度 | 第84-85页 |
4. 讨论 | 第85-88页 |
4.1 沉积物和文蛤肠道中微生物群落的组成和特异性 | 第85-86页 |
4.2 沉积物与文蛤肠道中微生物群落结构的差异性 | 第86页 |
4.3 沉积物与文蛤肠道中氮循环功能细菌之间的关系 | 第86-88页 |
参考文献 | 第88-105页 |
读博期间研究成果 | 第105-106页 |
本研究课题来源 | 第106-107页 |
致谢 | 第107页 |