| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略词表 | 第13-18页 |
| 第一章 绪论 | 第18-21页 |
| 第二章 PNLs的制剂学研究 | 第21-45页 |
| 1 仪器与试剂 | 第21-22页 |
| 1.1 试剂 | 第21-22页 |
| 1.2 仪器 | 第22页 |
| 2 实验内容 | 第22-27页 |
| 2.1 DOX和HMME含量HPLC测定方法的建立 | 第22-23页 |
| 2.1.1 DOX和HMME检测波长的确定 | 第22页 |
| 2.1.2 色谱条件 | 第22-23页 |
| 2.1.3 DOX和HMME标准曲线的建立 | 第23页 |
| 2.1.4 准确度 | 第23页 |
| 2.1.5 精密度 | 第23页 |
| 2.2 包封率的测定 | 第23-24页 |
| 2.3 空白脂质体（BNL）的制备及处方的筛选 | 第24页 |
| 2.3.1 胆固醇和磷脂的比例 | 第24页 |
| 2.3.2 探超功率 | 第24页 |
| 2.3.3 探超时间 | 第24页 |
| 2.4 PNLs的制备及处方筛选 | 第24-25页 |
| 2.4.1 药脂比 | 第25页 |
| 2.4.2 孵育温度 | 第25页 |
| 2.4.3 孵育时间 | 第25页 |
| 2.5 脂质体的物理化学性质的考察 | 第25-27页 |
| 2.5.1 脂质体稳定性考察 | 第25页 |
| 2.5.2 脂质体的紫外可见全波长扫描 | 第25页 |
| 2.5.3 脂质体粒径的考察 | 第25-26页 |
| 2.5.4 脂质体的形貌分析 | 第26页 |
| 2.5.5 脂质体的包封率的考察 | 第26页 |
| 2.5.6 脂质体的活性氧考察 | 第26页 |
| 2.5.7 脂质体的体外释药考察 | 第26-27页 |
| 3 结果与讨论 | 第27-44页 |
| 3.1 DOX和HMME含量HPLC测定方法 | 第27-33页 |
| 3.1.1 DOX和HMME的检测波长 | 第27-28页 |
| 3.1.2 DOX和HMME的标准曲线 | 第28-32页 |
| 3.1.3 准确度 | 第32页 |
| 3.1.4 精密度 | 第32-33页 |
| 3.2 空白脂质体（BNL）的处方筛选 | 第33-35页 |
| 3.2.1 磷脂和胆固醇的比例 | 第33-34页 |
| 3.2.2 探超功率 | 第34页 |
| 3.2.3 探超时间 | 第34-35页 |
| 3.3 PNLs脂质体的处方筛选 | 第35-37页 |
| 3.3.1 药脂比 | 第35-36页 |
| 3.3.2 孵育温度 | 第36页 |
| 3.3.3 孵育时间 | 第36-37页 |
| 3.4 脂质体的物理化学性质的考察 | 第37-44页 |
| 3.4.1 脂质体稳定性考察 | 第37-38页 |
| 3.4.2 脂质体的紫外全波长扫描 | 第38-39页 |
| 3.4.3 脂质体的粒径考察 | 第39-40页 |
| 3.4.4 脂质体的形貌分析 | 第40页 |
| 3.4.5 脂质体的包封率的考察 | 第40-41页 |
| 3.4.6 脂质体的活性氧考察 | 第41-42页 |
| 3.4.7 脂质体的体外释药考察 | 第42-44页 |
| 4 本章小结 | 第44-45页 |
| 第三章 PNLs的体外抗肿瘤活性研究 | 第45-58页 |
| 1 仪器与试剂 | 第45-47页 |
| 1.1 仪器 | 第45页 |
| 1.2 试剂 | 第45-46页 |
| 1.3 溶液的配制 | 第46-47页 |
| 1.3.1 SRB溶液的配制 | 第46页 |
| 1.3.2 PBS溶液的配制 | 第46页 |
| 1.3.3 DAPI溶液的配制 | 第46页 |
| 1.3.4 4%多聚甲醛溶液的配制 | 第46页 |
| 1.3.5 培养基的配制 | 第46页 |
| 1.3.6 1%乙酸的配制 | 第46-47页 |
| 2 实验内容 | 第47-50页 |
| 2.1 人乳腺癌耐药细胞株（MCF-7/MDR）的培养 | 第47页 |
| 2.1.1 细胞培养前的准备 | 第47页 |
| 2.1.2 细胞培养 | 第47页 |
| 2.2 PNLs的体外摄取 | 第47-48页 |
| 2.3 P-gp含量的测定 | 第48页 |
| 2.4 活性氧实验 | 第48页 |
| 2.5 细胞毒性实验 | 第48-49页 |
| 2.5.1 SRB检测方法 | 第48-49页 |
| 2.5.2 SRB法研究空白脂质体对MCF-7/MDR细胞的毒性 | 第49页 |
| 2.5.3 SRB法研究NL（DOX）、NL（HMME）、PNLs对MCF-7/MDR细胞存活率的影响 | 第49页 |
| 2.6 细胞凋亡实验 | 第49-50页 |
| 3 结果与讨论 | 第50-57页 |
| 3.1 PNLs在体外MCF-7/MDR细胞摄取和药物释放 | 第50-52页 |
| 3.2 P-gp含量的测定 | 第52-53页 |
| 3.3 细胞内活性氧实验 | 第53-54页 |
| 3.4 细胞毒性实验 | 第54-56页 |
| 3.5 细胞凋亡实验 | 第56-57页 |
| 4 本章总结 | 第57-58页 |
| 第四章 PNLs的体内抗肿瘤活性研究 | 第58-72页 |
| 1 仪器与试剂 | 第58-59页 |
| 1.1 试剂 | 第58页 |
| 1.2 仪器 | 第58-59页 |
| 1.3 实验动物 | 第59页 |
| 2 实验内容 | 第59-61页 |
| 2.1 MCF-7/MDR荷瘤裸鼠模型的建立 | 第59页 |
| 2.2 PNLs的生物分布 | 第59页 |
| 2.3 体内抗肿瘤活性研究 | 第59-61页 |
| 2.3.1 肿瘤生长抑制的药效学实验 | 第59-60页 |
| 2.3.2 HE染色病理切片 | 第60页 |
| 2.3.3 TUNEL染色检测肿瘤组织细胞凋亡 | 第60-61页 |
| 2.3.4 P-gp免疫荧光染色 | 第61页 |
| 2.4 体内生物安全性 | 第61页 |
| 3 结果与讨论 | 第61-70页 |
| 3.1 PNLs在MCF-7/MDR荷瘤裸鼠体内各组织的中的分布 | 第61-62页 |
| 3.2 体内抗肿瘤活性研究 | 第62-69页 |
| 3.2.1 MCF/MDR荷瘤裸鼠肿瘤体积和体重的变化 | 第62-65页 |
| 3.2.2 HE染色病理切片 | 第65页 |
| 3.2.3 TUNEL染色检测肿瘤组织细胞凋亡 | 第65-67页 |
| 3.2.4 P-gp免疫荧光染色 | 第67-69页 |
| 3.3 体内生物安全性 | 第69-70页 |
| 4 本章小结 | 第70-72页 |
| 第五章 全文总结 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-81页 |
| 个人简介 | 第81-82页 |
| 致谢 | 第82页 |
