| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 缩略语 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-16页 |
| 研究现状、成果 | 第12-14页 |
| 研究目的、方法 | 第14-16页 |
| 一、天然提取物对变形链球菌耐酸性及生物膜形成的影响 | 第16-26页 |
| 1.1 对象与方法 | 第16-18页 |
| 1.1.1 材料与仪器 | 第16页 |
| 1.1.2 柠檬精油提取 | 第16页 |
| 1.1.3 实验菌株与培养基 | 第16-17页 |
| 1.1.4 菌悬液的制备 | 第17页 |
| 1.1.5 LEO、LIM、HPN及TP对变形链球菌耐酸性的影响 | 第17页 |
| 1.1.6 LEO、LIM、HPN及TP对变形链球菌生物膜形成能力的影响 | 第17-18页 |
| 1.2 结果 | 第18-24页 |
| 1.3 讨论 | 第24-25页 |
| 1.4 小结 | 第25-26页 |
| 二、天然提取物对变形链球菌LuxS基因转录水平表达的影响 | 第26-42页 |
| 2.1 对象和方法 | 第26-31页 |
| 2.1.1 材料与仪器 | 第26-27页 |
| 2.1.1.1 主要试剂 | 第26页 |
| 2.1.1.2 主要仪器 | 第26-27页 |
| 2.1.1.3 实验菌株与培养基 | 第27页 |
| 2.1.1.4 菌悬液制备 | 第27页 |
| 2.1.1.5 实验分组 | 第27页 |
| 2.1.1.6 菌液培养 | 第27页 |
| 2.1.2 方法 | 第27-31页 |
| 2.1.2.1 变行链球菌总RNA的提取 | 第27-28页 |
| 2.1.2.2.总RNA浓度、纯度和完整性鉴定 | 第28-29页 |
| 2.1.2.3 逆转录合成cDNA第一链 | 第29页 |
| 2.1.2.4 检测变形链球菌luxS基因表达水平 | 第29-31页 |
| 2.1.2.4.1 引物设计 | 第29页 |
| 2.1.2.4.2 PCR | 第29-30页 |
| 2.1.2.4.3 琼脂糖凝胶电泳鉴定PCR扩增产物 | 第30页 |
| 2.1.2.4.4 实时定量PCR反应体系和条件 | 第30-31页 |
| 2.1.3 Ct值统计分析 | 第31页 |
| 2.1.4 统计学处理 | 第31页 |
| 2.2 结果 | 第31-38页 |
| 2.2.1 细菌总RNA提取 | 第31-32页 |
| 2.2.2 PCR扩增结果 | 第32页 |
| 2.2.2.1 16SrRNA PCR扩增结果 | 第32页 |
| 2.2.2.2 luxS PCR扩增结果 | 第32页 |
| 2.2.3 RTQ-PCR的结果 | 第32-38页 |
| 2.2.3.1 luxS基因与目的基因的扩增曲线、熔解曲线 | 第32-35页 |
| 2.2.3.2 数据统计分析结果 | 第35-38页 |
| 2.3 讨论 | 第38-41页 |
| 2.4 小结 | 第41-42页 |
| 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-47页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第47-48页 |
| 综述 luxS基因在变形链球菌致龋能力中的作用 | 第48-61页 |
| 综述参考文献 | 第56-61页 |
| 致谢 | 第61页 |
