| 中文摘要 | 第4-6页 |
| 英文摘要 | 第6-7页 |
| 中英文缩略词 | 第8-12页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 第一部分 水溶性辅酶 Q10 对鱼藤酮致 PC12 细胞凋亡的保护作用及机制研究 | 第14-33页 |
| 引言 | 第14页 |
| 材料与方法 | 第14-25页 |
| 1. 材料 | 第14-19页 |
| 1.1 细胞株 | 第14页 |
| 1.2 主要试剂 | 第14-15页 |
| 1.3 主要仪器 | 第15-16页 |
| 1.4 药品的配制 | 第16-17页 |
| 1.5 主要试剂的配制 | 第17-19页 |
| 2. 方法 | 第19-25页 |
| 2.1 细胞培养 | 第19页 |
| 2.2 CCK-8 法检测细胞活性 | 第19-20页 |
| 2.3 Rot建立PD模型 | 第20页 |
| 2.4 不同浓度水溶性Co Q10对正常细胞以及PD模型细胞细胞存活率的影响 | 第20-21页 |
| 2.5 实验分组 | 第21页 |
| 2.6 细胞内活性氧（Reactive oxygen species，ROS）检测 | 第21页 |
| 2.7 线粒体膜电位的检测 | 第21-22页 |
| 2.8 Western blotting 检测 CoQ10 对凋亡信号蛋白 AIF，Bcl-2，Bax，Caspase-9及 active Caspase-3 表达的影响 | 第22-24页 |
| 2.9 统计学处理 | 第24-25页 |
| 结果 | 第25-30页 |
| 讨论 | 第30-33页 |
| 第二部分 水溶性辅酶 Q10 对鱼藤酮致 PC12 细胞线粒体融合与分裂的影响 | 第33-44页 |
| 引言 | 第33页 |
| 材料与方法 | 第33-39页 |
| 1. 材料 | 第33-36页 |
| 1.1 细胞株 | 第33页 |
| 1.2 主要试剂 | 第33-35页 |
| 1.3 主要仪器 | 第35页 |
| 1.4 药物的配制 | 第35-36页 |
| 1.5 主要试剂的配制 | 第36页 |
| 2. 方法 | 第36-39页 |
| 2.1 细胞培养 | 第36页 |
| 2.2 实验分组 | 第36页 |
| 2.3 水溶性Co Q10对线粒体片段化的影响 | 第36页 |
| 2.4 Western blotting检测Co Q10对线粒体融合、分裂蛋白表达的影响 | 第36-38页 |
| 2.5 统计学处理 | 第38-39页 |
| 结果 | 第39-41页 |
| 讨论 | 第41-44页 |
| 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-51页 |
| 文献综述 线粒体功能障碍与帕金森病 | 第51-61页 |
| 综述参考文献 | 第56-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 个人简历和攻读学位期间发表的学术论文 | 第62页 |
